Caracterización de cepas nativas de Bacillus thuringiensis como método para predecir la susceptibilidad sobre insectos lepidópteros, dípteros y coleópteros plaga de la agricultura

Caracterización de cepas nativas de Bacillus thuringiensis como método para predecir la susceptibilidad sobre insectos lepidópteros, dípteros y coleópteros plaga de la agricultura

Bacillus thuringiensis (Bt) es una bacteria entomopatógena utilizada en el control de insectos lepidópteros, coleópteros y dípteros plaga. Por la alta variabilidad genética en las proteínas Cry insecticidas, la caracterización de cepas de Bt representa un potencial para descubrir proteínas y actividades biológicas novedosas. En este estudio se realizó la caracterización microscópica, bioquímica y molecular de 20 cepas nativas de Bacillus thuringiensis pertenecientes al banco de cepas de la Universidad Jorge Tadeo Lozano (ujtl) con el fin de predecir su actividad biológica y su posible uso en control biológico. Las cepas caracterizadas se aislaron previamente en los departamentos de Boyacá (4), Cundinamarca (2), Huila (1) y Santander (5) y d... Ver más

Guardado en:

Revista Mutis

2256-1498

Hernández-Fernández, Javier

Cifuentes-Vega, Roger

Rodríguez-Tolosa, Rosa

UNIVERSIDAD JORGE TADEO LOZANO

10.21789/22561498.1963

13

2022-01-01

1

34

Colombia

ciencias naturales

cepas nativas

SDS PAGE

genes cry

Bacillus thuringiensis

http://purl.org/coar/access_right/c_abf2

info:eu-repo/semantics/openAccess

Revista Mutis - 2023

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.

id 80b458c16d208b2a923f22906cb7bf3e
record_format ojs
spelling Caracterización de cepas nativas de Bacillus thuringiensis como método para predecir la susceptibilidad sobre insectos lepidópteros, dípteros y coleópteros plaga de la agricultura
Ibarra, J., Del Rincón Castro, C., Galindo, E., Patiño, M., Serrano, L., García, R., Carrillo, J., Pereyra-Alférez, B., Alcázar-Pizaña, A., Luna-Olvera, H., Galán-Wong, l., Pardo, l., Muñoz-Garay, C., Gómez, I., Soberón, M. & Bravo A. (2006). Los Microorganismos en el control biológico de insectos fitopatógenos. Revista Latinoamericana de Microbiología. 48 (2), 113 – 120.
Martinez, C. & Caballero, P. (2002). Contents of cry genes and insecticidal toxicity of Bacillus thuringiensis strains from terrestrial and aquatic habitats. Journal of applied microbiology, 92(4), 745-752. https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.2002.01579.x
Márquez, A. M., Bergmann, M., Ribeiro, J. M. & Dias, C. S. (1996). Molecular screening of Bacillus thuringiensis strain for specific detection of cry III- type genes. Abstracts 29th Annual metting 3rd International Colloquium on Bacillus thuringiensis. Society for Invertebrate Pathology.
Madigan, M. T., Martinko, J. M., Parker, J., Fernández, E. G., Fernández, C. R. & Pérez, M. S. (2003). Biología de los Microorganismos. Décima Edición. Editorial Pearson Educación.
López-Pazos, S. A., & Cerón, J. (2010). Proteínas Cry de Bacillus thuringiensis y su interacción con Coleópteros. NOVA, 8(14), 183-194. https://doi.org/10.22490/24629448.449
Lopez, I., Ruiz-Larrea, F., Cocolin, L., Orr, E., Phister, T., Marshall, M. & Mills, D. A. (2003). Design and evaluation of PCR primers for analysis of bacterial populations in wine by denaturing gradient gel electrophoresis. Applied and Environmental Microbiology, 69(11), 6801-6807. https://doi.org/10.1128/AEM.69.11.6801-6807.2003
Lecadet, M., Frachon, E., Cosmao Dumanoir, V. C., Ripouteau, H., Hamon, S., Laurent, P. & Thiery, I. (1999). Updating the H‐antigen classification of Bacillus thuringiensis. Journal of Applied Microbiology, 86(4), 660-672. https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.1999.00710.x
Laemmli, U. K. (1970). Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 227, 680-685. https://doi.org/10.1038/227680a0
Khetan, S. (2001). Bacterial Insecticide: Bacillus thuringiensis. Microbial Pest Control. https://doi.org/10.1201/9781482270631
Katara, J., Deshmukh, R., Singh, N., Kaur, S. (2012). Molecular typing of native Bacillus thuringiensis isolates from diverse habitats in India using REP-PCR and ERIC-PCR analysis. J. Gen. Appl. Microbiol., 58, 83-94. https://doi.org/10.2323/jgam.58.83
Jiménez-Sánchez, A. & Guerrero, R. (1987). Genética Molecular Bacteriana. Editorial Reverté.
Huerta Canales, D. V. (2013). Caracterización molecular de cepas de Bacillus thuringiensis con propiedades entomocidas, para vectores transmisores de enfermedades metaxénicas (dengue) [Tesis de doctorado]. Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Facultad de Ciencias Biológicas.
Merdan, A., Salama, H.S., Labib, E., Ragaei & Abd El-Ghan, N.M., (2010). Bacillus thuringiensis isolates from soil and diseased insects in egyptian cotton fields and their activity against lepidopterous insects. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 43 (12), 1165-1176. https://doi.org/10.1080/03235400802366750
Höfte, H., & Whiteley, H. R. (1989). Insecticidal crystal proteins of Bacillus thuringiensis. Microbiological Reviews, 53(2), 242-255. https://doi.org/10.1128/mr.53.2.242-255.1989
Helgason, E., Okstad, O. A., Caugant, D., Johansen, H., Fouet, A., Mock, M., HengaI. & Kolsto, A.B. (2000). Genetic structure of population of Bacillus cereus and B. thuringiensis isolates associated with periodontitis and other human infections. J. Clin. Microbiol. 38, 1615– 1622. https://doi.org/10.1128/JCM.38.4.1615-1622.2000
Hernández-Fernández, J., (2016). Bacillus thuringiensis: a Natural Tool in Insect Pest Control. The Handbook of Microbial Bioresourses. CABIS. https://doi.org/10.1079/9781780645216.0121
Hernández-Fernández, J. (2015). Caracterización molecular de aislamientos nativos de Bacillus thuringiensis en Colombia. Universidad Jorge Tadeo Lozano, Facultad de Ciencias e Ingeniería. 7-99
Hernández Fernández, J., Reyes, R., Hernández, L. R., Quintero, N. F. y Fernández, L. (2012). Métodos estandarizados para la caracterización de cepas nativas de Bacillus thuringiensis para el control de insectos plaga: modelo Tuta absoluta. Universidad Jorge Tadeo Lozano. https://doi.org/10.2307/j.ctv2175qf9
Gough, J. M., Kemp, D. H., Akhurst, R. J., Pearson, R. D. & Kongsuwan, K. (2005). Identification and characterization of proteins from Bacillus thuringiensis with high toxic activity against the sheep blowfly, Lucilia cuprina. Journal of invertebrate pathology, 90(1), 39-46. https://doi.org/10.1016/j.jip.2005.05.012
Gillis, A. (2013). El arsenal de Bacillus thuringiensis: su uso en manejos agrícolas y en la industria alimentaria [The arsenal of Bacillus thuringiensis: its use in agricultural management and in the food industry]. Entomotropica, 28, 106-107.
Galvis, F. y Moreno, L. Y. (2014). Caracterización molecular mediante rep-PCR de aislados nativos de "Bacillus thuringiensis", obtenidos de muestras de suelo. Agronomía costarricense: Revista de ciencias agrícolas, 38(1), 223-229.
El-kersh, T. A., Al-sheikh, Y. A., Al-akeel, R. A. & Alsayed, A. A. (2012). Isolation and characterization of native Bacillus thuringiensis isolates from Saudi Arabia. African Journal of Biotechnology, 11(8), 1924-1938. https://doi.org/10.5897/AJB11.2717
De Liñan, C. (2001). Vademécum de productos fitosanitarios y nutricionales. Ediciones Agrotécnicas S.L.
Crickmore, N., Baum, J., Bravo, A., Lereclus, D., Narva, K., Sampson, K., Schnepf, E., Sun, M. & Zeigler, D.R. (2016). Bacillus thuringiensis toxin nomenclature.
Marchesi, J. R., Sato, T., Weightman, A. J., Martin, T. A., Fry, J. C., Hiom, S. J. & Wade, W.G. (1998). Design and Evaluation of Useful Bacterium-Specific PCR Primers That Amplify Genes Coding for Bacterial 16S rRNA. American Society for Microbiology. Applied and Environmental Microbiology. 64, (2).95–799. https://doi.org/10.1128/AEM.64.6.2333-2333.1998
Muñíz, H. M. (2014). Control de hongos fitopatógenos de importancia agrícola utilizando como agente a Bacillus thuringiensis (Berliner) [Tesis de maestría]. Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias biológicas, Nuevo León, México.
Crickmore, N., Zeigler, D.R., Schnepf, E., Van Rie, J., Lereclus, D., Baum, J, Bravo, A. & Dean D.H. (2011). B. thuringiensis toxin nomenclature. http://www.lifesci.sussex.ac.uk/Home/Neil_Crickmore/Bt/
Velasco, F. (2010). Estudio de los niveles de expresión temporal del cry 1 en aislados nativos mexicanos de Bacillus thuringiensis [Tesis de Maestría]. Instituto Politécnico Nacional, Centro de Biotecnología Genómica.
Text
http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
info:eu-repo/semantics/openAccess
http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85
info:eu-repo/semantics/publishedVersion
http://purl.org/redcol/resource_type/ARTREF
http://purl.org/coar/resource_type/c_6501
info:eu-repo/semantics/article
Zheng, A., Zhu, J., Tan, F., Guan, P., Yu, X., Wang, S., Deng, Q., Li, S., Liu, H. & Li, P. (2010). Characterization and expression of a novel haplotype cry2A-type gene from Bacillus thuringiensis strain JF19-2. Annals of Microbiology, 60(1), 129–134. https://doi.org/10.1007/s13213-009-0011-x
Zhang J, Kumar, S. & Nei, M. (1997) Small-sample tests of episodic adaptive evolution: a case study of primate lysozymes. Molecular Biology and Evolution,14, 1335-1338. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a025743
Wang, J., Boets, A., Van Rie, J. & Ren, G. (2003.) Characterization of cry1, cry2 and cry9 genes in Bacillus thuringiensis isolates from China. Journal of invertebrate Pathology, 82: 63-71. 130. https://doi.org/10.1016/S0022-2011(02)00202-1
Van Frankenhuyzen, K. (2009). Insecticidal activity of Bacillus thuringiensis crystal proteins. Journal of invertebrate pathology, 101(1), 1-16. https://doi.org/10.1016/j.jip.2009.02.009
Ohba, M. (1996). Bacillus thuringiensis populations naturally occurring on mulberry leaves: a possible source of the populations associated with silkworm‐rearing insectaries. Journal of Applied Bacteriology, 80(1), 56-64. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.1996.tb03190.x
Valicente, F.H., Barreto, M.R., de Vasconcelos, M.J.V., de Figueiredo, J.E.F.E. & Paiva, E. (2000). PCR identification of cry1 genes in Bacillus thuringiensis strains that are efficient against fall armyworm Spodoptera frugiperda (J.E.Smith) (Lepidoptera: Noctuidae). Anais da Sociedade Entomologica do Brasil, 29(1), 147–153. https://doi.org/10.1590/S0301-80592000000100018
Tortora, G., Funke, B. & Case, C. (2007). Introducción a la Microbiología. Novena Edición. Editorial Médica Panamericana.
Soufiane, B. & Cote, J.C. (2009). Discrimination among Bacillus thuringiensis H serotypes, serovars and strains based on 16S rRNA, gyrB and aroE gene sequence analyses. Antonie Van Leeuwenhoek, 95, 33-45. https://doi.org/10.1007/s10482-008-9285-4
Schwieger, F., & Tebbe, C. C. (1998). A new approach to utilize PCR–single-strand-conformation polymorphism for 16S rRNA gene-based microbial community analysis. Applied and Environmental Microbiology, 64(12), 4870-4876. https://doi.org/10.1128/AEM.64.12.4870-4876.1998
Schnepf, E., Crickmore, N., Van Rie, J., Lereclus, D., Baum, J.; Feitelson, J., Zeigler, D.R. & Dean, D.H. (1998). Bacillus thuringiensis and its pesticidal crystal proteins. Microbiology and molecular biolo¬gy reviews, 62(3), 775-806. https://doi.org/10.1128/MMBR.62.3.775-806.1998
Sauka, D. H. & Benintende, G. B. (2008). Bacillus thuringiensis: generalidades. Un acercamiento a su empleo en el biocontrol de insectos lepidópteros que son plagas agrícolas. Revista argentina de microbiología, 40, 124-140.
Salama, H. S., El-Ghany, N. A. & Saker, M. M. (2015). Diversity of Bacillus thuringiensis isolates from Egyptian soils as shown by molecular characterization. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 13(2), 101-109. https://doi.org/10.1016/j.jgeb.2015.10.001
Sambrook, J. & Russell, D. (2001). Molecular Cloning, a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York.
Rodicio, M. & Mendoza, M. (2004). Identificación bacteriana mediante secuenciación del ARNr 16S: fundamento, metodología y aplicaciones en microbiología clínica. Departamento de Biología Funcional. Área de Microbiología. Universidad de Oviedo. España. Revista Elsevier, 22(04), 238-244. https://doi.org/10.1157/13059055
Ramírez L., Ramírez N., Fuentes L., Jiménez J. & Hernández J., 2010. Aislamiento y caracterización molecular y biológica de cepas nativas de Bacillus thuringiensis para el control de Tuta absoluta (Meyrick: Lepidoptera: Gelechiidae), insecto plaga del to¬mate (Lycopersicon esculentum). Revista Asociación Colombiana de Ciencias Biológicas, (1) 22, 73-96.
Orozco, M., Bernal Villegas, J., & Hernández-Fernández, J. (2012). LSSP-PCR para la identificación de polimorfismos en el gen cry1B en cepas nativas de Bacillus thuringiensis. Revista Colombiana de Biotecnología, 14(1), 121-134.
Crickmore, N., Zeigler, D. R., Feitelson, J., Schnepf, E., Van Rie, J., Lereclus, D & Dean, D. H. (1998). Revision of the nomenclature for the Bacillus thuringiensis pesticidal crystal proteins. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 62(3), 807-813. https://doi.org/10.1128/MMBR.62.3.807-813.1998
Cerón, J., Covarrubias, L., Quintero, R., Ortiz, A., Ortiz, M., Aranda, E., Lina, L. & Bravo, A. (1994). PCR analysis of the cryI insecticidal crystal family genes from Bacillus thuringiensis. Applied and Environmental Microbiology, 60(1), 353-356. https://doi.org/10.1128/aem.60.1.353-356.1994
Publication
ciencias naturales
https://revistas.utadeo.edu.co/index.php/mutis/article/view/Caracterizacion-cepas-nativas-Bacillus-thuringiensis
Revista Mutis
Carreras, S. B. (2009).Obtención de aislados de Bacillus thuringiensis Berliner autóctonos de Cuba. Instituto de Investigaciones de Sanidad. Fitosanidad, 13(2).
application/pdf
Artículo de revista
1
13
cepas nativas
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0
PCR
SDS PAGE
genes cry
Bacillus thuringiensis
Hernández-Fernández, Javier
Cifuentes-Vega, Roger
Rodríguez-Tolosa, Rosa
Bacillus thuringiensis (Bt) es una bacteria entomopatógena utilizada en el control de insectos lepidópteros, coleópteros y dípteros plaga. Por la alta variabilidad genética en las proteínas Cry insecticidas, la caracterización de cepas de Bt representa un potencial para descubrir proteínas y actividades biológicas novedosas. En este estudio se realizó la caracterización microscópica, bioquímica y molecular de 20 cepas nativas de Bacillus thuringiensis pertenecientes al banco de cepas de la Universidad Jorge Tadeo Lozano (ujtl) con el fin de predecir su actividad biológica y su posible uso en control biológico. Las cepas caracterizadas se aislaron previamente en los departamentos de Boyacá (4), Cundinamarca (2), Huila (1) y Santander (5) y del ecosistema de manglar de la Ciénaga Grande de Santa Marta (8). Por microscopía de contraste de fases se observaron cristales amorfos (81.8%), triangulares, cuadrados y bipiramidales (18.2%). Utilizando pcr se identificaron entre 2-5 genes cry1 en 11 cepas nativas. Ocho cepas contienen los genes cry1Aa, cry1Ba y cry1Ca, (72.7%), cinco el gen cry1Ab (45.4%), tres el gen cry1Ac (27,2%) y únicamente dos cepas presentaron el gen cry1Da (18.1%). Se obtuvo el perfil electroforético de proteínas totales para las 11 cepas, encontrando proteínas con pesos moleculares entre 25-140 kDa e identificando cepas con perfiles electroforéticos con dos bandas (45.4%), tres (27.2%), cuatro (18.1%) y seis bandas de proteínas (9.1%).  La secuenciación nucleotídica del gen arnr 16S arrojó que cinco cepas nativas seleccionadas al azar presentaron un porcentaje de similaridad por encima del 94% con relación a las secuencias depositadas en la base de datos del ncbi. De estas cuatro cepas, tres tuvieron un porcentaje de similaridad del 99%, 98% y del 97% con el género Bacillus sp (zsujtl67, zmujtl63 y zcujtl3, respectivamente) y las otras dos cepas mostraron porcentajes de similaridad del 96% y 94% con Bacillus thuringiensis (zmujtl94 y zmujtl96). De acuerdo con el análisis realizado, se relacionaron los espectros de susceptibilidad de 10 especies de insectos de importancia para la agricultura colombiana: cinco lepidópteros, tres dípteros y dos coleópteros frente a las 11 cepas nativas evaluadas, encontrándose que una de estas cepas presenta una posible actividad biológica sobre estas 10 especies de insectos (zmujtl94). La metodología utilizada permite predecir la actividad biológica de las cepas antes de la realización de ensayos biológicos en los que se emplean mucho tiempo y representan altos costos.
Español
Universidad de Bogotá Jorge Tadeo Lozano
Revista Mutis - 2023
Bravo, A., Likitvivatanavong, S., Gill, S. S. & Soberón, M. (2011). Bacillus thuringiensis: a story of a successful bioinsecticide. Insect biochemistry and molecular biology, 41(7), 423-431. https://doi.org/10.1016/j.ibmb.2011.02.006
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
Bravo A., Sarabia, S., Lopez, L., Ontiveros, H., Abarca, C., Ortiz, A., Ortiz, M., Lina, L., Villalobos, F., Peña, G., Nuñez, M., Soberón, M. & Quintero, R. (1998). Characterization of cry Genes in a Mexican Bacillus thuringiensis strain collection. Applied and Environmental Microbiology, 64(12), 4965-4972. https://doi.org/10.1128/AEM.64.12.4965-4972.1998
Aronson, A. (2002). Sporulation and d-endotoxin synthesis by Bacillus thuringiensis. Cell Mol Life Sci, 59, 417–425. https://doi.org/10.1007/s00018-002-8434-6
Aronson, A. I., Beckman, W. & Dunn, P. (1986). Bacillus thuringiensis and related insect pathogens. Microbiological reviews, 50, 1-24. https://doi.org/10.1128/mr.50.1.1-24.1986
Arango, J. A., Romero, M. & Orduz, S. (2002). Diversity of Bacillus thuringiensis strains from Colombia with insecticidal activity against Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae). Journal of applied microbiology, 92(3), 466-474. https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.2002.01545.x
Bravo, A. y Cerón, J. (2004). Productos comerciales: nativos y recombinantes en Bacillus thuringiensis en el control biológico. Universidad Nacional de Colombia, 123-147.
Bravo, A. & Soberón, M. (2008). Las toxinas Cry de Bacillus thuringiensis: modo de acción y consecuencias de su aplicación. Instituto de Biotecnología, Universidad Nacional Autónoma de México, 303-313
Baig, D.N. & Mehnaz, S. (2010). Determination and distribution of cry-type genes in halophilc Bacillus thuringiensis isolates of Arabian Sea sedimentary rocks. Elsevier, 165, 376-383. https://doi.org/10.1016/j.micres.2009.08.003
Ammouneh, H., Harba, M., Idris, E. & Makee, H. (2011). Isolation and characterization of native Bacillus thuringiensis isolates from Syrian soil and testing of their insecticidal activities against some insect pests. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 35(4), 421-431. https://doi.org/10.3906/tar-1007-1117
Agudelo, C., Hernández, C. y Realpe, M., (2002). Especies del género Bacillus: morfología macroscópica y microscópica. Grupo de Microbiología, División de Biblioteca y Publicaciones. Instituto Nacional de Salud de Colombia.
Barloy, F., Delécluse, A., Nicolas, L. & Lecadet, M. M. (1996). Cloning and expression of the first anaerobic toxin gene from Clostridium bifermentans subsp. malaysia, encoding a new mosquitocidal protein with homologies to Bacillus thuringiensis delta-endotoxins. Journal of bacteriology, 178(11), 3099-3105. https://doi.org/10.1128/jb.178.11.3099-3105.1996
Ben-Dov, EQ, Zaritsky, A., Dahan E., Barak, Z., Sina, R. &Manasherob, R. (1997). Extended screening by PCR for seven cry group genes from field collected strains of Bacillus thuringiensis. Applied Environmental Microbiology, 63(12), 4883–90. https://doi.org/10.1128/aem.63.12.4883-4890.1997
Bernhard, K., Jarrett, P., Meadows, M., Butt, J., Ellis, D. J., Roberts, G. M. & Burges, H. D. (1997). Natural isolates of Bacillus thuringiensis: worldwide distribution, characterization, and activity against insect pests. Journal of Invertebrate Pathology, 70(1), 59-68. https://doi.org/10.1006/jipa.1997.4669
Carreras S. B., Bravo, A. y Sánchez, J. F. (2004). Caracterización molecular de cuatro cepas de Bacillus thuringiensis. Relación con su actividad biológica. Rev. Protección Veg. 19(2), 80-85.
Bou, G., Fernández-Olmos, A., García, C., Sáez-Nieto, J. A. & Valdezate, S. (2011). Métodos de identificación bacteriana en el laboratorio de microbiología. Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica, 29(8), 601-608. https://doi.org/10.1016/j.eimc.2011.03.012
Bacillus thuringiensis
Bacillus thuringiensis (Bt) is an entomopathogenic bacterium used to control insect pest Lepidoptera, Coleóptera and Díptera. For its high genetic variability in the Cry proteins, characterization of Bt strains in worldwide represents a potential to discover new proteins and biological activities. In this study was performed the microscopic, biochemical and molecular characterization of 20 native strains of Bacillus thuringiensis that belong to the ujtl bank of strains, in order to predict the biological activity and possible uses in biological control. Native strains were isolated from the departments of Boyacá (4), Cundinamarca (2), Huila (1) and Santander (5) and the mangrove ecosystem of the Ciénaga Grande de Santa Marta (8). For microscopic characterization, amorphous, square, triangular and bipyramidal crystals were observed. Using PCR 11 strains amplified between 2-5 cry1 genes. Eight strains had the cry1Aa gene (72.7%), five contained the cry1Ab gene (45.4%) and three contained the cry1Ac (27.2%) gene  and two strains had the cry1Da gene only (18.1%).  Eight strains also amplified cry1Ba gene and cry1Ca (72.7% for each gene) and only two strains showed the cry1Da gene (18.1%). Electrophoresis on denaturant polyacrylamide gel (sds-page) was used, where the total of protein electrophoretic profile for the 11 strains was obtained. In this profile it was found that the molecular weights obtained from the total proteins visualized in the gels ranged from 25 to 140 kDa and strains revealed two bands (45.4%), three bands (27.2%), four bands (18.1 found %) and 6 bands (9.1%). Nucleotide sequencing of 16S rRNA gene showed that, five native strains randomly selected showed a similarity percentage above 94% compared with the sequences deposited in the NCBI database. Of these five strains, three had a similarity percentage of 99%, 98% and 97% with Bacillus sp. (zsujtl67, zmujtl63 and zcujtl3 respectively) and the other two strains showed similarity percentages of  96% and 94% with Bacillus thuringiensis (zmujtl94 and zmujtl96). According to analysis, we related the spectra of susceptibility of 10 species of insects of importance for Colombian agriculture: five Lepidoptera, three Diptera and two Coleoptera, compared to 11 native strains evaluated, finding that one of these strains presents a possible biological activity on these 10 species of insects (zmujtl94 strain). This method allows to predict the biological activity of the strains before to biological testing that it take time and high costs.
native strain
cry genes
SDS PAGE
PCR
natual sciences
Journal article
Microscopic, biochemical and molecular characterization of Colombian native strains of Bacillus thuringiensis
https://revistas.utadeo.edu.co/index.php/mutis/article/download/Caracterizacion-cepas-nativas-Bacillus-thuringiensis/2005
2023-01-01T00:00:00Z
2023-01-01T00:00:00Z
2022-01-01
34
2256-1498
1
10.21789/22561498.1963
https://doi.org/10.21789/22561498.1963
institution UNIVERSIDAD JORGE TADEO LOZANO
thumbnail https://nuevo.metarevistas.org/UNIVERSIDADJORGETADEOLOZANO/logo.png
country_str Colombia
collection Revista Mutis
title Caracterización de cepas nativas de Bacillus thuringiensis como método para predecir la susceptibilidad sobre insectos lepidópteros, dípteros y coleópteros plaga de la agricultura
spellingShingle Caracterización de cepas nativas de Bacillus thuringiensis como método para predecir la susceptibilidad sobre insectos lepidópteros, dípteros y coleópteros plaga de la agricultura
Hernández-Fernández, Javier
Cifuentes-Vega, Roger
Rodríguez-Tolosa, Rosa
ciencias naturales
cepas nativas
SDS PAGE
genes cry
Bacillus thuringiensis
Bacillus thuringiensis
native strain
cry genes
SDS PAGE
natual sciences
title_short Caracterización de cepas nativas de Bacillus thuringiensis como método para predecir la susceptibilidad sobre insectos lepidópteros, dípteros y coleópteros plaga de la agricultura
title_full Caracterización de cepas nativas de Bacillus thuringiensis como método para predecir la susceptibilidad sobre insectos lepidópteros, dípteros y coleópteros plaga de la agricultura
title_fullStr Caracterización de cepas nativas de Bacillus thuringiensis como método para predecir la susceptibilidad sobre insectos lepidópteros, dípteros y coleópteros plaga de la agricultura
title_full_unstemmed Caracterización de cepas nativas de Bacillus thuringiensis como método para predecir la susceptibilidad sobre insectos lepidópteros, dípteros y coleópteros plaga de la agricultura
title_sort caracterización de cepas nativas de bacillus thuringiensis como método para predecir la susceptibilidad sobre insectos lepidópteros, dípteros y coleópteros plaga de la agricultura
title_eng Microscopic, biochemical and molecular characterization of Colombian native strains of Bacillus thuringiensis
description Bacillus thuringiensis (Bt) es una bacteria entomopatógena utilizada en el control de insectos lepidópteros, coleópteros y dípteros plaga. Por la alta variabilidad genética en las proteínas Cry insecticidas, la caracterización de cepas de Bt representa un potencial para descubrir proteínas y actividades biológicas novedosas. En este estudio se realizó la caracterización microscópica, bioquímica y molecular de 20 cepas nativas de Bacillus thuringiensis pertenecientes al banco de cepas de la Universidad Jorge Tadeo Lozano (ujtl) con el fin de predecir su actividad biológica y su posible uso en control biológico. Las cepas caracterizadas se aislaron previamente en los departamentos de Boyacá (4), Cundinamarca (2), Huila (1) y Santander (5) y del ecosistema de manglar de la Ciénaga Grande de Santa Marta (8). Por microscopía de contraste de fases se observaron cristales amorfos (81.8%), triangulares, cuadrados y bipiramidales (18.2%). Utilizando pcr se identificaron entre 2-5 genes cry1 en 11 cepas nativas. Ocho cepas contienen los genes cry1Aa, cry1Ba y cry1Ca, (72.7%), cinco el gen cry1Ab (45.4%), tres el gen cry1Ac (27,2%) y únicamente dos cepas presentaron el gen cry1Da (18.1%). Se obtuvo el perfil electroforético de proteínas totales para las 11 cepas, encontrando proteínas con pesos moleculares entre 25-140 kDa e identificando cepas con perfiles electroforéticos con dos bandas (45.4%), tres (27.2%), cuatro (18.1%) y seis bandas de proteínas (9.1%).  La secuenciación nucleotídica del gen arnr 16S arrojó que cinco cepas nativas seleccionadas al azar presentaron un porcentaje de similaridad por encima del 94% con relación a las secuencias depositadas en la base de datos del ncbi. De estas cuatro cepas, tres tuvieron un porcentaje de similaridad del 99%, 98% y del 97% con el género Bacillus sp (zsujtl67, zmujtl63 y zcujtl3, respectivamente) y las otras dos cepas mostraron porcentajes de similaridad del 96% y 94% con Bacillus thuringiensis (zmujtl94 y zmujtl96). De acuerdo con el análisis realizado, se relacionaron los espectros de susceptibilidad de 10 especies de insectos de importancia para la agricultura colombiana: cinco lepidópteros, tres dípteros y dos coleópteros frente a las 11 cepas nativas evaluadas, encontrándose que una de estas cepas presenta una posible actividad biológica sobre estas 10 especies de insectos (zmujtl94). La metodología utilizada permite predecir la actividad biológica de las cepas antes de la realización de ensayos biológicos en los que se emplean mucho tiempo y representan altos costos.
description_eng Bacillus thuringiensis (Bt) is an entomopathogenic bacterium used to control insect pest Lepidoptera, Coleóptera and Díptera. For its high genetic variability in the Cry proteins, characterization of Bt strains in worldwide represents a potential to discover new proteins and biological activities. In this study was performed the microscopic, biochemical and molecular characterization of 20 native strains of Bacillus thuringiensis that belong to the ujtl bank of strains, in order to predict the biological activity and possible uses in biological control. Native strains were isolated from the departments of Boyacá (4), Cundinamarca (2), Huila (1) and Santander (5) and the mangrove ecosystem of the Ciénaga Grande de Santa Marta (8). For microscopic characterization, amorphous, square, triangular and bipyramidal crystals were observed. Using PCR 11 strains amplified between 2-5 cry1 genes. Eight strains had the cry1Aa gene (72.7%), five contained the cry1Ab gene (45.4%) and three contained the cry1Ac (27.2%) gene  and two strains had the cry1Da gene only (18.1%).  Eight strains also amplified cry1Ba gene and cry1Ca (72.7% for each gene) and only two strains showed the cry1Da gene (18.1%). Electrophoresis on denaturant polyacrylamide gel (sds-page) was used, where the total of protein electrophoretic profile for the 11 strains was obtained. In this profile it was found that the molecular weights obtained from the total proteins visualized in the gels ranged from 25 to 140 kDa and strains revealed two bands (45.4%), three bands (27.2%), four bands (18.1 found %) and 6 bands (9.1%). Nucleotide sequencing of 16S rRNA gene showed that, five native strains randomly selected showed a similarity percentage above 94% compared with the sequences deposited in the NCBI database. Of these five strains, three had a similarity percentage of 99%, 98% and 97% with Bacillus sp. (zsujtl67, zmujtl63 and zcujtl3 respectively) and the other two strains showed similarity percentages of  96% and 94% with Bacillus thuringiensis (zmujtl94 and zmujtl96). According to analysis, we related the spectra of susceptibility of 10 species of insects of importance for Colombian agriculture: five Lepidoptera, three Diptera and two Coleoptera, compared to 11 native strains evaluated, finding that one of these strains presents a possible biological activity on these 10 species of insects (zmujtl94 strain). This method allows to predict the biological activity of the strains before to biological testing that it take time and high costs.
author Hernández-Fernández, Javier
Cifuentes-Vega, Roger
Rodríguez-Tolosa, Rosa
author_facet Hernández-Fernández, Javier
Cifuentes-Vega, Roger
Rodríguez-Tolosa, Rosa
topicspa_str_mv ciencias naturales
cepas nativas
SDS PAGE
genes cry
Bacillus thuringiensis
topic ciencias naturales
cepas nativas
SDS PAGE
genes cry
Bacillus thuringiensis
Bacillus thuringiensis
native strain
cry genes
SDS PAGE
natual sciences
topic_facet ciencias naturales
cepas nativas
SDS PAGE
genes cry
Bacillus thuringiensis
Bacillus thuringiensis
native strain
cry genes
SDS PAGE
natual sciences
citationvolume 13
citationissue 1
publisher Universidad de Bogotá Jorge Tadeo Lozano
ispartofjournal Revista Mutis
source https://revistas.utadeo.edu.co/index.php/mutis/article/view/Caracterizacion-cepas-nativas-Bacillus-thuringiensis
language Español
format Article
rights http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
info:eu-repo/semantics/openAccess
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0
Revista Mutis - 2023
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
references Ibarra, J., Del Rincón Castro, C., Galindo, E., Patiño, M., Serrano, L., García, R., Carrillo, J., Pereyra-Alférez, B., Alcázar-Pizaña, A., Luna-Olvera, H., Galán-Wong, l., Pardo, l., Muñoz-Garay, C., Gómez, I., Soberón, M. & Bravo A. (2006). Los Microorganismos en el control biológico de insectos fitopatógenos. Revista Latinoamericana de Microbiología. 48 (2), 113 – 120.
Martinez, C. & Caballero, P. (2002). Contents of cry genes and insecticidal toxicity of Bacillus thuringiensis strains from terrestrial and aquatic habitats. Journal of applied microbiology, 92(4), 745-752. https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.2002.01579.x
Márquez, A. M., Bergmann, M., Ribeiro, J. M. & Dias, C. S. (1996). Molecular screening of Bacillus thuringiensis strain for specific detection of cry III- type genes. Abstracts 29th Annual metting 3rd International Colloquium on Bacillus thuringiensis. Society for Invertebrate Pathology.
Madigan, M. T., Martinko, J. M., Parker, J., Fernández, E. G., Fernández, C. R. & Pérez, M. S. (2003). Biología de los Microorganismos. Décima Edición. Editorial Pearson Educación.
López-Pazos, S. A., & Cerón, J. (2010). Proteínas Cry de Bacillus thuringiensis y su interacción con Coleópteros. NOVA, 8(14), 183-194. https://doi.org/10.22490/24629448.449
Lopez, I., Ruiz-Larrea, F., Cocolin, L., Orr, E., Phister, T., Marshall, M. & Mills, D. A. (2003). Design and evaluation of PCR primers for analysis of bacterial populations in wine by denaturing gradient gel electrophoresis. Applied and Environmental Microbiology, 69(11), 6801-6807. https://doi.org/10.1128/AEM.69.11.6801-6807.2003
Lecadet, M., Frachon, E., Cosmao Dumanoir, V. C., Ripouteau, H., Hamon, S., Laurent, P. & Thiery, I. (1999). Updating the H‐antigen classification of Bacillus thuringiensis. Journal of Applied Microbiology, 86(4), 660-672. https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.1999.00710.x
Laemmli, U. K. (1970). Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 227, 680-685. https://doi.org/10.1038/227680a0
Khetan, S. (2001). Bacterial Insecticide: Bacillus thuringiensis. Microbial Pest Control. https://doi.org/10.1201/9781482270631
Katara, J., Deshmukh, R., Singh, N., Kaur, S. (2012). Molecular typing of native Bacillus thuringiensis isolates from diverse habitats in India using REP-PCR and ERIC-PCR analysis. J. Gen. Appl. Microbiol., 58, 83-94. https://doi.org/10.2323/jgam.58.83
Jiménez-Sánchez, A. & Guerrero, R. (1987). Genética Molecular Bacteriana. Editorial Reverté.
Huerta Canales, D. V. (2013). Caracterización molecular de cepas de Bacillus thuringiensis con propiedades entomocidas, para vectores transmisores de enfermedades metaxénicas (dengue) [Tesis de doctorado]. Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Facultad de Ciencias Biológicas.
Merdan, A., Salama, H.S., Labib, E., Ragaei & Abd El-Ghan, N.M., (2010). Bacillus thuringiensis isolates from soil and diseased insects in egyptian cotton fields and their activity against lepidopterous insects. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 43 (12), 1165-1176. https://doi.org/10.1080/03235400802366750
Höfte, H., & Whiteley, H. R. (1989). Insecticidal crystal proteins of Bacillus thuringiensis. Microbiological Reviews, 53(2), 242-255. https://doi.org/10.1128/mr.53.2.242-255.1989
Helgason, E., Okstad, O. A., Caugant, D., Johansen, H., Fouet, A., Mock, M., HengaI. & Kolsto, A.B. (2000). Genetic structure of population of Bacillus cereus and B. thuringiensis isolates associated with periodontitis and other human infections. J. Clin. Microbiol. 38, 1615– 1622. https://doi.org/10.1128/JCM.38.4.1615-1622.2000
Hernández-Fernández, J., (2016). Bacillus thuringiensis: a Natural Tool in Insect Pest Control. The Handbook of Microbial Bioresourses. CABIS. https://doi.org/10.1079/9781780645216.0121
Hernández-Fernández, J. (2015). Caracterización molecular de aislamientos nativos de Bacillus thuringiensis en Colombia. Universidad Jorge Tadeo Lozano, Facultad de Ciencias e Ingeniería. 7-99
Hernández Fernández, J., Reyes, R., Hernández, L. R., Quintero, N. F. y Fernández, L. (2012). Métodos estandarizados para la caracterización de cepas nativas de Bacillus thuringiensis para el control de insectos plaga: modelo Tuta absoluta. Universidad Jorge Tadeo Lozano. https://doi.org/10.2307/j.ctv2175qf9
Gough, J. M., Kemp, D. H., Akhurst, R. J., Pearson, R. D. & Kongsuwan, K. (2005). Identification and characterization of proteins from Bacillus thuringiensis with high toxic activity against the sheep blowfly, Lucilia cuprina. Journal of invertebrate pathology, 90(1), 39-46. https://doi.org/10.1016/j.jip.2005.05.012
Gillis, A. (2013). El arsenal de Bacillus thuringiensis: su uso en manejos agrícolas y en la industria alimentaria [The arsenal of Bacillus thuringiensis: its use in agricultural management and in the food industry]. Entomotropica, 28, 106-107.
Galvis, F. y Moreno, L. Y. (2014). Caracterización molecular mediante rep-PCR de aislados nativos de "Bacillus thuringiensis", obtenidos de muestras de suelo. Agronomía costarricense: Revista de ciencias agrícolas, 38(1), 223-229.
El-kersh, T. A., Al-sheikh, Y. A., Al-akeel, R. A. & Alsayed, A. A. (2012). Isolation and characterization of native Bacillus thuringiensis isolates from Saudi Arabia. African Journal of Biotechnology, 11(8), 1924-1938. https://doi.org/10.5897/AJB11.2717
De Liñan, C. (2001). Vademécum de productos fitosanitarios y nutricionales. Ediciones Agrotécnicas S.L.
Crickmore, N., Baum, J., Bravo, A., Lereclus, D., Narva, K., Sampson, K., Schnepf, E., Sun, M. & Zeigler, D.R. (2016). Bacillus thuringiensis toxin nomenclature.
Marchesi, J. R., Sato, T., Weightman, A. J., Martin, T. A., Fry, J. C., Hiom, S. J. & Wade, W.G. (1998). Design and Evaluation of Useful Bacterium-Specific PCR Primers That Amplify Genes Coding for Bacterial 16S rRNA. American Society for Microbiology. Applied and Environmental Microbiology. 64, (2).95–799. https://doi.org/10.1128/AEM.64.6.2333-2333.1998
Muñíz, H. M. (2014). Control de hongos fitopatógenos de importancia agrícola utilizando como agente a Bacillus thuringiensis (Berliner) [Tesis de maestría]. Universidad Autónoma de Nuevo León, Facultad de Ciencias biológicas, Nuevo León, México.
Crickmore, N., Zeigler, D.R., Schnepf, E., Van Rie, J., Lereclus, D., Baum, J, Bravo, A. & Dean D.H. (2011). B. thuringiensis toxin nomenclature. http://www.lifesci.sussex.ac.uk/Home/Neil_Crickmore/Bt/
Velasco, F. (2010). Estudio de los niveles de expresión temporal del cry 1 en aislados nativos mexicanos de Bacillus thuringiensis [Tesis de Maestría]. Instituto Politécnico Nacional, Centro de Biotecnología Genómica.
Zheng, A., Zhu, J., Tan, F., Guan, P., Yu, X., Wang, S., Deng, Q., Li, S., Liu, H. & Li, P. (2010). Characterization and expression of a novel haplotype cry2A-type gene from Bacillus thuringiensis strain JF19-2. Annals of Microbiology, 60(1), 129–134. https://doi.org/10.1007/s13213-009-0011-x
Zhang J, Kumar, S. & Nei, M. (1997) Small-sample tests of episodic adaptive evolution: a case study of primate lysozymes. Molecular Biology and Evolution,14, 1335-1338. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a025743
Wang, J., Boets, A., Van Rie, J. & Ren, G. (2003.) Characterization of cry1, cry2 and cry9 genes in Bacillus thuringiensis isolates from China. Journal of invertebrate Pathology, 82: 63-71. 130. https://doi.org/10.1016/S0022-2011(02)00202-1
Van Frankenhuyzen, K. (2009). Insecticidal activity of Bacillus thuringiensis crystal proteins. Journal of invertebrate pathology, 101(1), 1-16. https://doi.org/10.1016/j.jip.2009.02.009
Ohba, M. (1996). Bacillus thuringiensis populations naturally occurring on mulberry leaves: a possible source of the populations associated with silkworm‐rearing insectaries. Journal of Applied Bacteriology, 80(1), 56-64. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.1996.tb03190.x
Valicente, F.H., Barreto, M.R., de Vasconcelos, M.J.V., de Figueiredo, J.E.F.E. & Paiva, E. (2000). PCR identification of cry1 genes in Bacillus thuringiensis strains that are efficient against fall armyworm Spodoptera frugiperda (J.E.Smith) (Lepidoptera: Noctuidae). Anais da Sociedade Entomologica do Brasil, 29(1), 147–153. https://doi.org/10.1590/S0301-80592000000100018
Tortora, G., Funke, B. & Case, C. (2007). Introducción a la Microbiología. Novena Edición. Editorial Médica Panamericana.
Soufiane, B. & Cote, J.C. (2009). Discrimination among Bacillus thuringiensis H serotypes, serovars and strains based on 16S rRNA, gyrB and aroE gene sequence analyses. Antonie Van Leeuwenhoek, 95, 33-45. https://doi.org/10.1007/s10482-008-9285-4
Schwieger, F., & Tebbe, C. C. (1998). A new approach to utilize PCR–single-strand-conformation polymorphism for 16S rRNA gene-based microbial community analysis. Applied and Environmental Microbiology, 64(12), 4870-4876. https://doi.org/10.1128/AEM.64.12.4870-4876.1998
Schnepf, E., Crickmore, N., Van Rie, J., Lereclus, D., Baum, J.; Feitelson, J., Zeigler, D.R. & Dean, D.H. (1998). Bacillus thuringiensis and its pesticidal crystal proteins. Microbiology and molecular biolo¬gy reviews, 62(3), 775-806. https://doi.org/10.1128/MMBR.62.3.775-806.1998
Sauka, D. H. & Benintende, G. B. (2008). Bacillus thuringiensis: generalidades. Un acercamiento a su empleo en el biocontrol de insectos lepidópteros que son plagas agrícolas. Revista argentina de microbiología, 40, 124-140.
Salama, H. S., El-Ghany, N. A. & Saker, M. M. (2015). Diversity of Bacillus thuringiensis isolates from Egyptian soils as shown by molecular characterization. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 13(2), 101-109. https://doi.org/10.1016/j.jgeb.2015.10.001
Sambrook, J. & Russell, D. (2001). Molecular Cloning, a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York.
Rodicio, M. & Mendoza, M. (2004). Identificación bacteriana mediante secuenciación del ARNr 16S: fundamento, metodología y aplicaciones en microbiología clínica. Departamento de Biología Funcional. Área de Microbiología. Universidad de Oviedo. España. Revista Elsevier, 22(04), 238-244. https://doi.org/10.1157/13059055
Ramírez L., Ramírez N., Fuentes L., Jiménez J. & Hernández J., 2010. Aislamiento y caracterización molecular y biológica de cepas nativas de Bacillus thuringiensis para el control de Tuta absoluta (Meyrick: Lepidoptera: Gelechiidae), insecto plaga del to¬mate (Lycopersicon esculentum). Revista Asociación Colombiana de Ciencias Biológicas, (1) 22, 73-96.
Orozco, M., Bernal Villegas, J., & Hernández-Fernández, J. (2012). LSSP-PCR para la identificación de polimorfismos en el gen cry1B en cepas nativas de Bacillus thuringiensis. Revista Colombiana de Biotecnología, 14(1), 121-134.
Crickmore, N., Zeigler, D. R., Feitelson, J., Schnepf, E., Van Rie, J., Lereclus, D & Dean, D. H. (1998). Revision of the nomenclature for the Bacillus thuringiensis pesticidal crystal proteins. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 62(3), 807-813. https://doi.org/10.1128/MMBR.62.3.807-813.1998
Cerón, J., Covarrubias, L., Quintero, R., Ortiz, A., Ortiz, M., Aranda, E., Lina, L. & Bravo, A. (1994). PCR analysis of the cryI insecticidal crystal family genes from Bacillus thuringiensis. Applied and Environmental Microbiology, 60(1), 353-356. https://doi.org/10.1128/aem.60.1.353-356.1994
Carreras, S. B. (2009).Obtención de aislados de Bacillus thuringiensis Berliner autóctonos de Cuba. Instituto de Investigaciones de Sanidad. Fitosanidad, 13(2).
Bravo, A., Likitvivatanavong, S., Gill, S. S. & Soberón, M. (2011). Bacillus thuringiensis: a story of a successful bioinsecticide. Insect biochemistry and molecular biology, 41(7), 423-431. https://doi.org/10.1016/j.ibmb.2011.02.006
Bravo A., Sarabia, S., Lopez, L., Ontiveros, H., Abarca, C., Ortiz, A., Ortiz, M., Lina, L., Villalobos, F., Peña, G., Nuñez, M., Soberón, M. & Quintero, R. (1998). Characterization of cry Genes in a Mexican Bacillus thuringiensis strain collection. Applied and Environmental Microbiology, 64(12), 4965-4972. https://doi.org/10.1128/AEM.64.12.4965-4972.1998
Aronson, A. (2002). Sporulation and d-endotoxin synthesis by Bacillus thuringiensis. Cell Mol Life Sci, 59, 417–425. https://doi.org/10.1007/s00018-002-8434-6
Aronson, A. I., Beckman, W. & Dunn, P. (1986). Bacillus thuringiensis and related insect pathogens. Microbiological reviews, 50, 1-24. https://doi.org/10.1128/mr.50.1.1-24.1986
Arango, J. A., Romero, M. & Orduz, S. (2002). Diversity of Bacillus thuringiensis strains from Colombia with insecticidal activity against Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae). Journal of applied microbiology, 92(3), 466-474. https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.2002.01545.x
Bravo, A. y Cerón, J. (2004). Productos comerciales: nativos y recombinantes en Bacillus thuringiensis en el control biológico. Universidad Nacional de Colombia, 123-147.
Bravo, A. & Soberón, M. (2008). Las toxinas Cry de Bacillus thuringiensis: modo de acción y consecuencias de su aplicación. Instituto de Biotecnología, Universidad Nacional Autónoma de México, 303-313
Baig, D.N. & Mehnaz, S. (2010). Determination and distribution of cry-type genes in halophilc Bacillus thuringiensis isolates of Arabian Sea sedimentary rocks. Elsevier, 165, 376-383. https://doi.org/10.1016/j.micres.2009.08.003
Ammouneh, H., Harba, M., Idris, E. & Makee, H. (2011). Isolation and characterization of native Bacillus thuringiensis isolates from Syrian soil and testing of their insecticidal activities against some insect pests. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 35(4), 421-431. https://doi.org/10.3906/tar-1007-1117
Agudelo, C., Hernández, C. y Realpe, M., (2002). Especies del género Bacillus: morfología macroscópica y microscópica. Grupo de Microbiología, División de Biblioteca y Publicaciones. Instituto Nacional de Salud de Colombia.
Barloy, F., Delécluse, A., Nicolas, L. & Lecadet, M. M. (1996). Cloning and expression of the first anaerobic toxin gene from Clostridium bifermentans subsp. malaysia, encoding a new mosquitocidal protein with homologies to Bacillus thuringiensis delta-endotoxins. Journal of bacteriology, 178(11), 3099-3105. https://doi.org/10.1128/jb.178.11.3099-3105.1996
Ben-Dov, EQ, Zaritsky, A., Dahan E., Barak, Z., Sina, R. &Manasherob, R. (1997). Extended screening by PCR for seven cry group genes from field collected strains of Bacillus thuringiensis. Applied Environmental Microbiology, 63(12), 4883–90. https://doi.org/10.1128/aem.63.12.4883-4890.1997
Bernhard, K., Jarrett, P., Meadows, M., Butt, J., Ellis, D. J., Roberts, G. M. & Burges, H. D. (1997). Natural isolates of Bacillus thuringiensis: worldwide distribution, characterization, and activity against insect pests. Journal of Invertebrate Pathology, 70(1), 59-68. https://doi.org/10.1006/jipa.1997.4669
Carreras S. B., Bravo, A. y Sánchez, J. F. (2004). Caracterización molecular de cuatro cepas de Bacillus thuringiensis. Relación con su actividad biológica. Rev. Protección Veg. 19(2), 80-85.
Bou, G., Fernández-Olmos, A., García, C., Sáez-Nieto, J. A. & Valdezate, S. (2011). Métodos de identificación bacteriana en el laboratorio de microbiología. Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica, 29(8), 601-608. https://doi.org/10.1016/j.eimc.2011.03.012
type_driver info:eu-repo/semantics/article
type_coar http://purl.org/coar/resource_type/c_6501
type_version info:eu-repo/semantics/publishedVersion
type_coarversion http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85
type_content Text
publishDate 2022-01-01
date_accessioned 2023-01-01T00:00:00Z
date_available 2023-01-01T00:00:00Z
url https://revistas.utadeo.edu.co/index.php/mutis/article/view/Caracterizacion-cepas-nativas-Bacillus-thuringiensis
url_doi https://doi.org/10.21789/22561498.1963
eissn 2256-1498
doi 10.21789/22561498.1963
citationstartpage 1
citationendpage 34
url2_str_mv https://revistas.utadeo.edu.co/index.php/mutis/article/download/Caracterizacion-cepas-nativas-Bacillus-thuringiensis/2005
_version_ 1797158853568102400

Código QR

Estadísticas y Métricas Alternativas

Títulos similares