Contracaecum multipapillatum (Nematoda: Anisakidae) en peces de aguas continentales de Guanacaste, Costa Rica e Izabal, Guatemala
Contracaecum multipapillatum infecta peces como hospedadores intermediarios y al ser humano como hospedador accidental por consumo de carne de pescado cruda o semi cocinada. Este riesgo para la salud humana hace importante determinar su prevalencia, intensidad de infección y ubicación anatómica en peces destinados al consumo mediante pesca artesanal; y la influencia de parámetros físicoquímicos del agua sobre la infección en peces. Se recolectaron 214 peces en 6 ríos de Cañas, Guanacaste, Costa Rica y 203 peces en el Lago de Izabal y Río Dulce, Izabal, Guatemala. En los sitios de pesca se tomaron parámetros físicoquímicos del agua (temperatura, pH y oxígeno disuelto). La prevalencia de infección fue 16.8% y 25.1% en Guanacaste e Izabal, res... Ver más
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Early development and life cycle of Contracaecum multipapillatum s.l. from a brown pelican Pelecanus occidentalis in the Gulf of California, Mexico. Dis Aquat Org. 2017; 125:167-178. https://doi.org/10.3354/dao03147 Chiclla A, y Tantas D. Infection of Contracaecum sp. larvae (NEMATODA: ANISAKIDAE) in Tilapia (Oreochromis niloticus) of Perú. Biologys. 2015. 13(2):419-427. http://sisbib.unmsm.edu.pe/BVRevistas/biologist/v13_n2/pdf/a21v13n2.pdf Maniscalchi M, Lemus D, Marcano Y, Edgar N, Marianella Z, Narváez N. Larvas anisakidae en peces del género mugil comercializados en mercados de la región costera nor-oriental e insular de Venezuela. Saber. 2015; 27(1):30-38. http://www.scielo.org.ve/pdf/saber/v27n1/art05.pdf Serrano E, Tantalean M, Quispe M, Casas G. Presencia de larvas de Contracaecum sp. (Nematoda, Anisakidae) en el pez Astronotus ocellatus, destinado al consumo humano en Loreto, Peru. Salud Tecnol Vet. 2015; 3(2):31-34. https://doi.org/10.20453/stv.v3i1.2757 Menghi C, Comunaleb E, Gattaa, C. Anisakiosis: primer diagnóstico en Buenos Aires, Argentina. Rev Soc Ven Microbiol. 2011; 31(1):71-73. http://190.169.30.98/ojs/index.php/rev_vm/article/download/3087/2952 Menghi C, Gatta C, Arias L, Santonia G, Nicola F, Smayevsky J, et al. Human infection with Pseudoterranova cattani by ingestion of “ceviche” in Buenos Aires, Argentina. Rev Argent Microbiol. 2019; 1-3. https://doi.org/10.1016/j.ram.2019.06.005 Lim H, Jung B, Cho J, Yooyen T, Shin E, Chai J. Molecular Diagnosis of Cause of Anisakiasis in Humans, South Korea. Emerg. Infect. Dis. 2015; 21(2):342-344. https://doi.org/10.3201/eid2102.140798 Solas M, García M, de las Heras C. Anisakis simplex antigens in fresh and frozen-thawed muscle of anchovies in vinegar. Food Sci Technol Int. 2009. 15(2):139-148. https://doi.org/10.1177/1082013208105171 da Silva R, Penha A, Nascimento J, Guerreiro E. Contracaecum larvae: morphological and morphometric retrospective analysis, biogeographay and zoonotic risk in the amazona. Braz J Vet Parasitol. 2019; 28(1):12-32. http://doi.org/10.1590/S1984-29612019002 D’Amelio S, Cavallero S, Dronen N, Barros N, Paggi L. Two new species of Contracaecum Railliet and Henry 1912 (Nematoda: Anisakidae), C. fagerholmi n. sp. and C. rudolphii F from the brown pelican Pelecanus occidentalis in the northern Gulf of Mexico. Syst Parasitol. Syst Parasitol. 2012; 81(1):1–16. https://doi.org/10.1007/s11230-011-9323-x Bautista C, Monks S, Pulido G, Rodríguez A. Revisión bibliográfica de algunos términos ecológicos usados en parasitología, y su aplicación en estudios de caso. En: Pulido G, Monks S, Lopez M, editores. Estudios en Biodiversidad. Vol 1. Lincoln: Zea E-Books; 2015. https://digitalcommons.unl.edu/cgi/viewcontent.cgi?article=1034&context=zeabook Álvarez A, Méndez Y, Reyes J, Romo C, Hernández G. Nematode parasites in the striped mullet (Mugil cephalus Linnaeus, 1758) in the southern Gulf of California. Lat Am J Aquat Res. 2020. 48(1):106-113. https://doi.org/10.3856/vol48-issue1-fulltext-2326 https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ Iglesias L, Benítez R, Adroher F, Valero A. Helminth infection in Mugil incilis from Cartagena de Indias, Colombian Caribbean coast. Helminthologia. 2011. 48(1):36-40. https://doi.org/10.2478/s11687-011-0007-5 Hernández J, Aznar F, Blasco I, García N, Vilora M, Crespo E, et al. Description, microhabitat selection and infection patterns of sealworm larvae (Pseudoterranova decipiens species complex, nematoda: ascaridoidea) in fishes from Patagonia, Argentina. Parasit Vectors. 2013. 6(252):1-15. https://doi.org/10.1186/1756-3305-6-252 Boyd C. Solar Radiation and Water Temperature. En Boyd, C. E. Water Quality: An Introduction (Segunda ed.). Londres, Inglaterra: Springer International Publishing. 2015. https://doi.org/10.1007/978-3-030-23335-8_2 Boyd C. Dissolved Oxygen and Other Gases. En Boyd, C. E. Water Quality: An Introduction (Segunda ed.). Londres, Inglaterra: Springer International Publishing. 2015. https://doi.org/10.1007/978-3-030-23335-8_7 Boyd C. Carbon Dioxide, pH, and Alkalinity. En Boyd, C. E. Water Quality: An Introduction (Segunda ed.). Londres, Inglaterra: Springer International Publishing. 2015. https://doi.org/10.1007/978-3-030-23335-8_9 Monks S, Pulido G, Bautista C, Alemán B, Falcón J, Gaytán J. El uso de helmintos parásitos como bioindicadores en la evaluación de la calidad del agua: Lago de Tecocomulco vs. Laguna de Metztitlán, Hidalgo, México. En: Pulido G, Monks S, editores. Estudios científicos en el estado de Hidalgo y zonas aledañas. Vol 2. 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Este riesgo para la salud humana hace importante determinar su prevalencia, intensidad de infección y ubicación anatómica en peces destinados al consumo mediante pesca artesanal; y la influencia de parámetros físicoquímicos del agua sobre la infección en peces. Se recolectaron 214 peces en 6 ríos de Cañas, Guanacaste, Costa Rica y 203 peces en el Lago de Izabal y Río Dulce, Izabal, Guatemala. En los sitios de pesca se tomaron parámetros físicoquímicos del agua (temperatura, pH y oxígeno disuelto). La prevalencia de infección fue 16.8% y 25.1% en Guanacaste e Izabal, respectivamente, encontrándose 105 larvas de tercer estadio (L3) en 36 peces de Guanacaste y 135 L3 en 51 peces de Izabal. Se observó afinidad de L3 por órganos viscerales (22.4% en Guanacaste – 25.1% en Izabal) y menor por tejido muscular (2.0% en Guanacaste – 1.0% en Izabal). La intensidad de infección directamente proporcional con la talla y peso de los peces (una larva en 13 peces con peso y talla media de 66.7 g y 17.5 cm en Guanacaste, y siete peces de 214.9 g y 28.4 cm en Izabal; y 14 larvas en un pez de 148.8 g y 24 cm en Guanacaste y 12 larvas en un pez de 260 g y 40 cm en Izabal). No se observó asociación entre parámetros fisicoquímicos del agua y susceptibilidad de peces a infección. Choc-M, Luis Felipe Jiménez-R, Ana Arguedas-C, Donald Dolz, Gaby Parasitos Contracecosis Zoonosis Infección Prevalencia 12 2 Pesca artesanal Artículo de revista https://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/view/e767 application/pdf Universidad de Sucre Revista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA zoonoses Contracaecum multipapillatum (Nematoda: Anisakidae) in inland water fish from Guanacaste, Costa Rica and Izabal, Guatemala Contracaecum multipapillatum infects fish as intermediate hosts and humans as accidental hosts when consuming raw or semi-cooked fish meat, causing Contracecosis. This risk to human health makes important to determine prevalence, infection intensity and anatomical location in fish for human consumption through artisanal fishing; and the physicochemical parameters influence of water on infection in fish. 214 fish were collected in 6 rivers from Cañas, Guanacaste, Costa Rica and 203 fish in Izabal Lake and Río Dulce, Izabal, Guatemala. Water physicochemical parameters (temperature, pH and dissolved oxygen) were taken at fishing sites. The infection prevalence was 16.8% and 25.1% in Guanacaste and Izabal, respectively, 36 fish were found infected with 105 larvae of the third stage (L3) in Guanacaste and 135 larvae were found in 51 infected fish in Izabal. A higher affinity of L3 was observed in visceral organs (22.4% in Guanacaste - 25.1% in Izabal) and lower affinity in muscle tissue (2.0% in Guanacaste – 1.0% in Izabal). Infection intensity was proportional to the size and weight fish (1 larva in 13 fish with average weight and size of 66.7 g and 17.5 cm in Guanacaste, and in 7 fish with weight and average size of 214.9 g and 28.4 cm in Izabal; while 14 larvae were found in a fish of 148.8 g and 24 cm in Guanacaste and 12 larvae in a fish of 260g and 40 cm in Izabal). No association was observed between the water physicochemical parameters and the fish susceptibility to infection. Parasites Contracecosis infection Journal article artisanal fishing prevalence https://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/download/e767/906 2020-07-01 2027-4297 e767 e767 https://doi.org/10.24188/recia.v12.n2.2020.767 2020-07-01T00:00:00Z 2020-07-01T00:00:00Z 10.24188/recia.v12.n2.2020.767 |
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Dis Aquat Org. 2017; 125:167-178. https://doi.org/10.3354/dao03147 Chiclla A, y Tantas D. Infection of Contracaecum sp. larvae (NEMATODA: ANISAKIDAE) in Tilapia (Oreochromis niloticus) of Perú. Biologys. 2015. 13(2):419-427. http://sisbib.unmsm.edu.pe/BVRevistas/biologist/v13_n2/pdf/a21v13n2.pdf Maniscalchi M, Lemus D, Marcano Y, Edgar N, Marianella Z, Narváez N. Larvas anisakidae en peces del género mugil comercializados en mercados de la región costera nor-oriental e insular de Venezuela. Saber. 2015; 27(1):30-38. http://www.scielo.org.ve/pdf/saber/v27n1/art05.pdf Serrano E, Tantalean M, Quispe M, Casas G. Presencia de larvas de Contracaecum sp. (Nematoda, Anisakidae) en el pez Astronotus ocellatus, destinado al consumo humano en Loreto, Peru. Salud Tecnol Vet. 2015; 3(2):31-34. https://doi.org/10.20453/stv.v3i1.2757 Menghi C, Comunaleb E, Gattaa, C. Anisakiosis: primer diagnóstico en Buenos Aires, Argentina. 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