Resistencia a metales pesados y antimicrobianos en cepas de enterococos aisladas de cerdos del Valle Inferior del Río Chubut - Argentina
El objetivo de este trabajo fue determinar la presencia de factores de virulencia, resistencia a metales pesados y antibióticos en 65 cepas de Enterococcus aisladas del contenido fecal de cerdos, recolectadas en el Valle Inferior del Río Chubut. La producción de exopolisacáridos fue el factor de virulencia más frecuente y se detectó en 45 cepas, mientras que la actividad de gelatinasa se presentó en una sola cepa; el mismo resultado se obtuvo para la actividad hemolítica. La prueba en agar reveló que 25 cepas presentaron resistencia a zinc (≥12 mM) mientras que 64 exhibieron resistencia intermedia a cobre (4-12 mM). Todas las cepas seleccionadas en función de su resistencia al zinc exhibieron resistencia a tetraciclina, dos de ellas a vanco... Ver más
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Efecto de la suplementación con fuentes de cobre sobre el comportamiento productivo, morfometría intestinal y nivel de cobre hepático en pollos de carne. Rev Investig Vet Peru. 2014; 25(1):16–28. http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1609-91172014000100002 Hammmerum A. Enterococci of animal origin and their significance for public health. Clin Microbiol Infect. 2012; 18(7):619–625. https://doi.org/10.1111/j.1469-0691.2012.03829.x Sharifi Y, Abedzadeh A, Salighe A, Kalhor N, Khodadad Motlagh, M Javadi A. Antibiotics and heavy metals resistance patterns of Enterococcus faecalis and faecium bacteria isolated from the human and the livestock sources. Environ Heal Eng Manag J. 2015; 2(4):199–202. http://ehemj.com/browse.php?a_id=125&sid=1&slc_lang=en Vallejo M, Ledesma P, Ibañez C, Aguirre L, Parada R, Vallejo B, et al. Resistencia a metales pesados, antibióticos y factores de virulencia en cepas de Enterococcus aisladas en la provincia del Chubut Argentina. RSVM. 2016; 36:16–22. http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1315-25562016000100005 Ledesma P, Parada R, Vallejo M, Marguet E. Factores de virulencia de cepas de Enterococcus aisladas de aves silvestres y de corral en la Patagonia. Analecta Vet. 2015; 35(1):6–12. http://www.fcv.unlp.edu.ar/images/stories/analecta/vol_35_n1/264_Ledesma.pdf Ciftci A, Findik A, İça T, Bas B, Onuk E, Güngördü S. Slime production and antibiotic resistance of Enterococcus faecalis isolated from arthritis in chickens. J Vet Sci Med. 2009; 71:849–853. https://doi.org/10.1292/jvms.71.849 Aarestrup F, Hasman H. Susceptibility of different bacterial species isolated from food animals to copper sulphate, zinc chloride and antimicrobial substances used for disinfection. Vet Microbiol. 2004; 100(1-2):83–89. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2004.01.013 Manero A, Blanch A. Identification of Enterococcus spp. with a biochemical key. J Appl Env Microbiol. 1999; 65(10):4425–30. https://doi.org/10.1128/AEM.65.10.4425-4430.1999 Clinical and Laboratory Standards Institute-VET. Performance standards for antimicrobial disk and dilution susceptibility test for bacteria isolated from animals, 5th ed. CLSI standard vet01 Wayne PA: Cl Clinical and Laboratory Standards Institute; 2018. https://clsi.org/media/2325/vet01ed5_sample.pdf Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial Susceptibility testing; 28th ed. CLSI supplement M100. Table 2E. Zone Diameter and MIC Breakpints for Enterococcus spp. Wayne PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2018. https://clsi.org/media/1930/m100ed28_sample.pdf Aarestrup FM, Agerso Y, Gerner-Smidt P, Madsen M, Jensen LB. Comparison of antimicrobial resistance phenotypes and resistance genes in Enterococcus faecalis and Enterococcus faecium from humans in the community, broilers, and pigs in Denmark. Diagn Microbiol Infect Dis 2000; 37(2):127–137. https://doi:10.1016/s0732-8893(00)00130-9 Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE). Código Sanitario para los Animales Terrestres (Vol. I). 22nd ed. Organización Mundial De Sanidad Animal: Francia; 2013. https://www.oie.int/doc/ged/D12823.PDF Ch’ng J, Chong K, Lam L, Wong J, Kline K. Biofilm-associated infection by enterococci. Nat Rev Microbiol. 2018; 17(2):82–94. https://doi.org/10.1038/s41579-018-0128-7 Ardoino S, Toso R, Toribio M, Álvarez H, Mariani E, Cachau P, et al. Antimicrobianos como promotores de crecimiento (AGP) en alimentos balanceados para aves: uso, resistencia bacteriana, nuevas alternativas y opciones de reemplazo. Cienc Vet. 2017; 19(1):50–66. https://doi.org/10.19137/cienvet-20171914 Tsikrikonis G, Maniatis A, Labrou M, Ntokou E, Michail G, Daponte A, et al. Differences in biofilm formation and virulence factors between clinical and fecal enterococcal isolates of human and animal origin. Microb Pathog. 2012; 52(6):336–343. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2012.03.003 Li L, Xia Y, Zhang T. Co-occurrence of antibiotic and metal resistance genes revealed in complete genome collection. ISME J. 2016; 11(3):651–662. https://doi.org/10.1038/ismej.2016.155 Hao H, Sander P, Iqbal Z, Wang Y, Cheng G, Yuan Z. The risk of some veterinary antimicrobial agents on public health associated with antimicrobial resistance and their molecular basis. Front Microbiol. 2016; 7:16–26. https://dx.doi.org/10.3389%2Ffmicb.2016.01626 Pantozzi F, Moredo F, Vigo G, Giacoboni I. Resistencia a los antimicrobianos en bacterias indicadoras y zoonóticas aisladas de animales domésticos en Argentina. Rev Argent Microbiol. 2010; 42:49–52. http://sedici.unlp.edu.ar/bitstream/handle/10915/70634/Documento_completo.pdf-PDFA.pdf?sequence=1&isAllowed=y SENASA. Programa Nacional de Vigilancia de resistencia a los antimicrobianos en los animales destinados a consumo humano. Res. 591/2015. Ministerio de Agricultura, Ganadería y Pesca: Argentina; 2015. http://www.senasa.gov.ar/sites/default/files/normativas/archivos/res_591-2015.pdf Tan S, Chong C, Ju Teh C, Ooi P, Thong K. Occurrence of virulent multidrug-resistant Enterococcus faecalis and Enterococcus faecium in the pigs, farmers and farm environments in Malaysia. Peer J. 2018; 6:e5353. https://doi.org/10.7717/peerj.5353 info:eu-repo/semantics/article http://purl.org/coar/resource_type/c_6501 http://purl.org/redcol/resource_type/ARTREF info:eu-repo/semantics/publishedVersion http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 info:eu-repo/semantics/openAccess http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 Text Nezhad Fard, RM Heuzenroeder M, Barton M. Antimicrobial and heavy metal resistance in commensal enterococci isolated from pigs. Vet Microbiol. 2011; 148:276–282. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2010.09.002 Publication https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ Artículo de revista El objetivo de este trabajo fue determinar la presencia de factores de virulencia, resistencia a metales pesados y antibióticos en 65 cepas de Enterococcus aisladas del contenido fecal de cerdos, recolectadas en el Valle Inferior del Río Chubut. La producción de exopolisacáridos fue el factor de virulencia más frecuente y se detectó en 45 cepas, mientras que la actividad de gelatinasa se presentó en una sola cepa; el mismo resultado se obtuvo para la actividad hemolítica. La prueba en agar reveló que 25 cepas presentaron resistencia a zinc (≥12 mM) mientras que 64 exhibieron resistencia intermedia a cobre (4-12 mM). Todas las cepas seleccionadas en función de su resistencia al zinc exhibieron resistencia a tetraciclina, dos de ellas a vancomicina y solo una a teicoplanina. Todas las cepas seleccionadas resultaron sensibles a la ampicilina. Mediante PCR se obtuvo la amplificación del gen tetM en 22 cepas que mostraron resistencia a la tetraciclina. Los resultados obtenidos en este estudio evidenciarían el uso generalizado de zinc y tetraciclina como promotores de crecimiento en la alimentación de cerdos. Esta práctica ejerce una presión selectiva en especies bacterianas animales y contribuye a la propagación de la resistencia a los antibióticos. Vallejo, Marisol Gil, Marianela Soledad Parada, Romina Belén Marguet, Emilio Rogelio Promotores del crecimiento tetraciclina alimentación animal resistencia a antibióticos zinc 2 Núm. 2 , Año 2020 : RECIA 12(2):JULIO-DICIEMBRE 2020 12 Español https://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/view/e763 application/pdf Universidad de Sucre Revista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA Journal article tetracycline The objective of this work was to determine the presence of virulence factors, heavy metal resistance and antibiotic in 65 Enterococcus strains isolated from fecal content of pigs, collected in the Valle Inferior del Río Chubut. Exopolysaccharides production was the most frequent virulence factor and was detected in 45 strains, while gelatinase activity was displayed by only one strain; same result was obtained for hemolytic activity. Agar plates test revealed that 25 strains were resistant to zinc (≥12 mM) while 64 strains exhibited intermediate copper resistance (4-12 mM). All strains selected on the basis of their resistance to zinc exhibited resistance to tetracycline, two of them resistance to vancomycin and only one resistance to teicoplanin. All strains selected were sensitive to ampicillin. PCR techniques allowed the amplification of tetM gen in 22 strains among the 25 that showed resistance to tetracycline. The results obtained in this study would evidence the widespread usage of zinc and tetracycline as growth promoters in pig feeding. This practice exerts selective pressure in animal bacterial species and contributes to the spread of antibiotic resistance. Growth promoters animal feed antibiotic resistance zinc Resistance to heavy metals and antimicrobial in enterococci strains isolated from pigs of Valle Inferior del Río Chubut - Argentina 2020-07-01T00:00:00Z https://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/download/e763/893 2027-4297 2020-07-01 10.24188/recia.v12.n2.2020.763 https://doi.org/10.24188/recia.v12.n2.2020.763 2020-07-01T00:00:00Z e763 e763 |
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Factores de virulencia de cepas de Enterococcus aisladas de aves silvestres y de corral en la Patagonia. Analecta Vet. 2015; 35(1):6–12. http://www.fcv.unlp.edu.ar/images/stories/analecta/vol_35_n1/264_Ledesma.pdf Ciftci A, Findik A, İça T, Bas B, Onuk E, Güngördü S. Slime production and antibiotic resistance of Enterococcus faecalis isolated from arthritis in chickens. J Vet Sci Med. 2009; 71:849–853. https://doi.org/10.1292/jvms.71.849 Aarestrup F, Hasman H. Susceptibility of different bacterial species isolated from food animals to copper sulphate, zinc chloride and antimicrobial substances used for disinfection. Vet Microbiol. 2004; 100(1-2):83–89. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2004.01.013 Manero A, Blanch A. Identification of Enterococcus spp. with a biochemical key. J Appl Env Microbiol. 1999; 65(10):4425–30. https://doi.org/10.1128/AEM.65.10.4425-4430.1999 Clinical and Laboratory Standards Institute-VET. Performance standards for antimicrobial disk and dilution susceptibility test for bacteria isolated from animals, 5th ed. CLSI standard vet01 Wayne PA: Cl Clinical and Laboratory Standards Institute; 2018. https://clsi.org/media/2325/vet01ed5_sample.pdf Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial Susceptibility testing; 28th ed. CLSI supplement M100. Table 2E. Zone Diameter and MIC Breakpints for Enterococcus spp. Wayne PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2018. https://clsi.org/media/1930/m100ed28_sample.pdf Aarestrup FM, Agerso Y, Gerner-Smidt P, Madsen M, Jensen LB. Comparison of antimicrobial resistance phenotypes and resistance genes in Enterococcus faecalis and Enterococcus faecium from humans in the community, broilers, and pigs in Denmark. Diagn Microbiol Infect Dis 2000; 37(2):127–137. https://doi:10.1016/s0732-8893(00)00130-9 Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE). Código Sanitario para los Animales Terrestres (Vol. I). 22nd ed. Organización Mundial De Sanidad Animal: Francia; 2013. https://www.oie.int/doc/ged/D12823.PDF Ch’ng J, Chong K, Lam L, Wong J, Kline K. Biofilm-associated infection by enterococci. Nat Rev Microbiol. 2018; 17(2):82–94. https://doi.org/10.1038/s41579-018-0128-7 Ardoino S, Toso R, Toribio M, Álvarez H, Mariani E, Cachau P, et al. Antimicrobianos como promotores de crecimiento (AGP) en alimentos balanceados para aves: uso, resistencia bacteriana, nuevas alternativas y opciones de reemplazo. Cienc Vet. 2017; 19(1):50–66. https://doi.org/10.19137/cienvet-20171914 Tsikrikonis G, Maniatis A, Labrou M, Ntokou E, Michail G, Daponte A, et al. Differences in biofilm formation and virulence factors between clinical and fecal enterococcal isolates of human and animal origin. Microb Pathog. 2012; 52(6):336–343. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2012.03.003 Li L, Xia Y, Zhang T. 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