Reproducción en cautiverio de vizcaína Curimata mivartii con extracto pituitario de carpa
Con el objetivo de reproducir vizcaína Curimata mivartii, ejemplares de dos años de edad (n= 54), mantenidos en estanques en tierra (0,1 pez/m2) fueron inducidos con extracto pituitario de carpa (EPC) (Argent, USA) a razón de 6 mg/Kg de peso para las hembras en dos aplicaciones (10 % y 90% con 12 horas entre aplicación); mientras que los machos fueron inducidos con 4,8 mg/Kg EPC en dosis única. Antes de la inducción hormonal a cada hembra le fue realizada biopsia para verificar su estado de maduración gonadal. La muestra de ovocitos fue tratada con solución Serra (Chemí, Colombia) y después de tres minutos, con la ayuda de un estereoscopio de luz, (Leica, EZ4 W, Alemania) en objetivo de 4x, se determinó posición de la vesícula germinal (cén... Ver más
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Orinoquia - 2019
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Reproducción en cautiverio de vizcaína Curimata mivartii con extracto pituitario de carpa Chaves-Moreno L, Chacón-Rodríguez L, Lozada-Morales J, Motta-Delgado P, Murcia-Ordoñez B. Evaluación de la reproducción inducida de cachama blanca (Piaractus brachypomus) con acetato de buserelina. Vet Zootec. 2011;6(1):47-55. http://vip.ucaldas.edu.co/vetzootec/downloads/v6n1a05.pdf Mojica JI, Lasso C, Sánchez P, Usma JS, Álvarez R. (eds.). 2012. Libro rojo de peces dulceacuícolas de Colombia. Serie Libros Rojos de Especies Amenazadas de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales – Universidad Nacional de Colombia y Ministerio del Medio Ambiente. Bogotá, Colombia. p. 237-239. Mira T, Medina-Roble, Cruz-Casallas P. Evaluación de tres protocolos hormonales para la inducción de la espermiación en yaque (Leiarius marmoratus). Rev. MVZ Córdoba. 2010;15(2):2070-2077. http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S0122-02682010000200005 Macedo-Soares L, Birolo A, Freire A. Spatial and temporal distribution of fish eggs and larvae in a subtropical coastal lagoon, Santa Catarina State, Brazil. Neotropical Ichthyology. 2009;7(2):231-240. http://dx.doi.org/10.1590/S1679-62252009000200015 Jiménez-Segura L, Palacio J, López R. Características biológicas del blanquillo (Sorubim cuspicaudus) Littmann, Burr y Nass, 2000 y bagre rayado (Pseudoplatystoma magdaleniatum) Buitrago Suárez y Burr, 2007 (Siluriformes: Pimelodidae) relacionadas con su reproducción en la cuenca media del río Magdalena, Colombia. Actual Biol. 2009;31(90):53-66. http://www.scielo.org.co/pdf/acbi/v31n90/v31n90a5.pdf Honji R, Tolussi C, Mello P, Caneppele D, Moreira R. Embryonic development and larval stages of Steindachneridion parahybae (Siluriformes: Pimelodidae) - implications for the conservation and rearing of this endangered Neotropical species. Neotropical Ichthyology. 2012;10(2):313-327. http://dx.doi.org/10.1590/S1679-62252012005000009 DoNascimento C, Herrera-Collazos EE, Herrera-R GA, Ortega-Lara A, Villa-Navarro FA, Usma Oviedo JS, Maldonado-Ocampo JA. Checklist of the freshwater fishes of Colombia: A Darwin Core alternative to the updating problem. ZooKeys. 2017;708:25-138. https://doi.org/10.3897/zookeys.708.13897 Díaz-Olarte J, Marciales-Caro L, Cristancho VF, Cruz-Casallas PE. Comparación del desarrollo embrionario de Piaractus brachypomus (Serrasalmidae) y Pseudoplatystoma sp. (Pimelodidae). Int. J. Morphol. 2010;28(4):1193-1204. http://dx.doi.org/10.4067/S0717-95022010000400033 Castillo-Losada E, Medina-Robles V, Cruz-Casallas P. Evaluación de la viabilidad de embriones de cachama blanca (Piaractus brachypomus) conservados a -14 °C en diferentes estadios de desarrollo embrionario. Arch Med Vet. 2016; 48(1):69-77 http://dx.doi.org/10.4067/S0301-732X2016000100009 Montes C, Salgado S. 2014. Efecto de la concentración de glucosa sobre la movilidad espermática de la dorada (charúa) Brycon sinuensis (Trabajo de pregrado). Departamento Ciencias Acuícolas, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad de Córdoba, Montería. Botta P, Sciara A, Arranz S, Murgas L, Pereira G, Oberlender G. Estudio del desarrollo embrionario del sábalo (Prochilodus lineatus). Arch Med Vet. 2010;42: 109-114. http://dx.doi.org/10.4067/S0301-732X2010000200014 Baumgartner G, Nakatani K, Gomes LC, Bialetzki A, Sanches PV, Makrakis MC. Fish larvae from the upper Paraná River: do abiotic factors affect larval density Neotrop Ichthyol. 2008;6(4):551-558. http://dx.doi.org/10.1590/S1679-62252008000400002 Avendaño-Ibarra R, Funes-Rodríguez R, Hinojosa-Medina A, González-Armas R, Aceves-Medina G. Seasonal abundance of fish larvae in a subtropical lagoon on in the west coast of the Baja California Peninsula. Estuar Coast Shelf Sci. 2004; 61(1):125-135. https://doi.org/10.1016/j.ecss.2004.03.017 Atencio-García V. Producción de alevinos de especies nativas. Rev MVZ Córdoba. 2001;6(1):9-14. Atencio-García V, Kerguelén-Durango E. Environmental characterization of the reproductive season of migratory fish of the Sinú river (Córdoba, Colombia). Rev MVZ Córdoba. 2015;20(3):4766-4778. http://www.scielo.org.co/pdf/mvz/v20n3/v20n3a10.pdf Atencio-Garcia V, Kerguelén-Durango E, Robert-Petro E. Desempeño reproductivo del bocachico (Prochilodus magdalenae) inducido dos veces en un mismo año. Rev MVZ Córdoba. 2013;18(1):3304-3310. www.scielo.org.co/pdf/mvz/v18n1/v18n1a08.pdf Atencio-Garcia V, Dorado-Longas M, Montes-Petro C, Prieto-Guevara M, Espinosa-Araujo J. Cryopreservation of dorada (Brycon moorei) sperm with dimethyl sulfoxide. Rev. colomb. Biotecnol. 2017;19(2):87-94. http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v19n2.59987 Mojica JI, Usma JS. 2012. Curimata mivartii. En: Mojica JI, Lasso C, Sánchez P, Usma JS, Álvarez R. (eds.). Libro rojo de peces dulceacuícolas de Colombia. Serie Libros Rojos de Especies Amenazadas de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales – Universidad Nacional de Colombia y Ministerio del Medio Ambiente. Bogotá, Colombia. Pp. 107-108. Montes-Petro C. 2018. Evaluación del desempeño reproductivo del bocachico (Prochilodus magdalenae) (Steindachner 1878), en cautiverio mediante predictores tempranos de calidad espermática y ovocitaria. Trabajo de grado, Facultad de Ciencias Básicas. Maestría en Biotecnología, Universidad de Córdoba, Montería, Colombia. Atencio-Garcia V, Arabia RF, Aristizabal J. 2006. Desarrollo embrionario y larvario de dorada (Brycon sinuensis). Comunic. Científ. CIVA. Pp. 604-618. On line: http://www.civa2006.org Zanandrea-volpato A, Weingartner M, Zaniboni-Filho E. Induced reproduction of dourado (Salminus brasiliensis): fertilization with sperm cryopreserved in ACP®-104. Acta Sci Anim Sci. 2016;(38):1. http://dx.doi.org/10.4025/actascianimsci.v38i1.28838 Text http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 info:eu-repo/semantics/openAccess http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 info:eu-repo/semantics/publishedVersion http://purl.org/coar/resource_type/c_6501 info:eu-repo/semantics/article Yaron Z, Bogomolnaya A, Drori S, Biton I, Aizen J, Kulikovsky Z, Levavi-Sivan B. Spawning Induction in the Carp: Past Experience and Future Prospects - A Review. Rev The Israeli Journal of Aquaculture – Bamidgeh. 2009;61(1):5-26. https://www.researchgate.net/publication/263280621_Spawning_Induction_in_the_Carp_Past_Experience_and_Future_Prospects_-_A_Review. Mylonas C, Fostier A, Zanuy S. Broodstock management and hormonal manipulations of fish reproduction. Gen Comp Endocrinol. 2010; 165:516-534. DOI: 10.1016/j.ygcen.2009.03.007 Weingartner M, Zaniboni-Filho E. 2010. Biologia e cultivo do Dourado. In B. Baldisserotto, & L. C. Gomes, (Eds), Espécies Nativas para Piscicultura no Brasil. Santa Maria, RS: Editora UFSM. Pp. 245-281. Valbuena–Villarreal R, Zapata-Berruecos B, Cruz-Casallas P. Reproducción inducida de capaz (Pimelodus grosskopfii) con extracto de hipófisis de carpa: reporte preliminar. Orinoquia. 2010;14(2):133-139. http://www.scielo.org.co/pdf/rori/v14n2/v14n2a03.pdf Valbuena VR, Zapata B, Ruales CD, Cruz-Casallas PE. Desarrollo embrionario del capaz (Pimelodus grosskopfii) (Steindachner, 1879). Int J Morphol. 2012; 30(1):150-156. http://dx.doi.org/10.4067/S0717-95022012000100027 Usma JS, Valderrama M, Escobar MD, Ajiaco-Martínez RE, Villa-Navarro F, Castro F, et al. 2009. Peces dulceacuícolas migratorios en Colombia. Pp. 103 – 131. En: Amaya, J. D. y L. G. Naranjo (Eds.). Plan Nacional de las Especies Migratorias: Diagnóstico e identificación de acciones para la conservación y el manejo sostenible de las especies migratorias de la biodiversidad en Colombia. MAVDT – WWF. Bogotá D. C. Colombia. p.214. Segura-Guevara F, López-Corrales H, De La Hoz C, Olaya-Nieto W. Reproductive biology of Liseta Leporinus muyscorum Steindachner, 1901 in the Sinú River, Colombia Rev MVZ Córdoba. 2017;22(1):5728-5737. http://dx.doi.org/10.21897/rmvz.932 Peressin A, Gonçalves C, Braga De Souza F. Reproductive strategies of two Curimatidae species in a Mogi Guaçu impoundment, upper Paraná River basin, São Paulo, Brazil. Neotropical Ichthyology. 2012;10(4):847-854. http://dx.doi.org/10.1590/S1679-62252012000400018 Nakatani K, Agostino AA, Baumgartner G, Bialetzky A, Sanches PV, Makrakis MC, Pavanelli CS. 2001. Ovos e larvas de peixes de agua doce: desenvolvimento e manual de identifação. Maringa: Eduem. p.377 Atencio-García V, Arguello L, González H. Reproducción inducida de la liseta Leporinus muyscorum (Steindachner, 1920) con extracto pituitario de carpa (EPC) Rev MVZ Córdoba. 2001;5(2):12. DOI: https://doi.org/10.21897/rmvz.529 Arias-Gallo M, Jiménez-Segura L, Dorado-Longas M del P. Desarrollo larval de Prochilodus magdalenae (Steindachner, 1879) (Pisces: prochilodontidae), río Magdalena, Colombia Actual Biol. 2010;32(93):199-208. http://www.scielo.org.co/pdf/acbi/v32n93/v32n93a7.pdf Arias-Acuña J, Hernández-Rangel J. Efectos del extracto hipofisiario de carpa común y el análogo de la GnRH sobre la maduración final del oocito y el desove de la cachama negra (Colossoma macropomum). Revista Científica, FCV-LUZ. 2009;19(5):486-494. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=95911615008 Artículo de revista Con el objetivo de reproducir vizcaína Curimata mivartii, ejemplares de dos años de edad (n= 54), mantenidos en estanques en tierra (0,1 pez/m2) fueron inducidos con extracto pituitario de carpa (EPC) (Argent, USA) a razón de 6 mg/Kg de peso para las hembras en dos aplicaciones (10 % y 90% con 12 horas entre aplicación); mientras que los machos fueron inducidos con 4,8 mg/Kg EPC en dosis única. Antes de la inducción hormonal a cada hembra le fue realizada biopsia para verificar su estado de maduración gonadal. La muestra de ovocitos fue tratada con solución Serra (Chemí, Colombia) y después de tres minutos, con la ayuda de un estereoscopio de luz, (Leica, EZ4 W, Alemania) en objetivo de 4x, se determinó posición de la vesícula germinal (céntrico, migrando, periférico, sin núcleo). El análisis de la biopsia ovárica mostró que las hembras se encontraban en maduración final. Los machos inducidos se encontraron en fase de espermiación; los cuales a ligera presión abdominal liberaron líquido seminal. Se estimó el índice de ovulación, fecundidad (absoluta y relativa), diámetro de los ovocitos y volumen seminal. El porcentaje de fertilidad fue estimado a las cuatro horas post-eclosión (hpe) y el porcentaje de eclosión fue estimado a las 10 hpe. Las hembras ovularon entre 5 y 6 horas (28±1,0°C) e inmediatamente los huevos fueron obtenidos por extrusión, así como el semen. La fecundidad absoluta fue de 178331,6±28773,7 ovocitos/hembra y la relativa 137,7±19,6 g ovocitos/Kg de hembra. El diámetro de los ovocitos recién desovados fue de 687,2±42,8 μm. La fertilidad fue de 90,7±1,4% y la eclosión de 85,3±1,5%. Los resultados permiten concluir que EPC a dosificación de 6mg/Kg de peso es un buen inductor de la reproducción de vizcaína, con alto índice de ovulación y altos porcentajes de fertilidad y eclosión. Montes-Petro, César Atencio-García, Víctor Estrada-Posada, Ana Yepes-Blandón, Jonny Curimatidae desove eclosión fecundidad Curimatidae desova incubação fecundidade 2 23 Publication Orinoquia https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/view/570 Orinoquia - 2019 Andrade D, Vidal JM, Godinho H, Tonini W, Burket D. Fecundidade da manjuba Curimatella lepidura (curimatidae) na represa de Três Marias, rio São Francisco, MG. Arq Bras Med Vet Zootec. 2010;62(6):1401-1408. http://dx.doi.org/10.1590/S0102-09352010000600016 Universidad de los Llanos application/pdf Andrade E, Felizardo V, Murgas L, Drumond M, Zangerônimo M, Costa S. Reproductive dynamics of Leporinus obtusidens captured downstream from an important hydropower Station in Brazil. Arq Bras Med Vet Zootec. 2013;5(65): 1419-1426. http://dx.doi.org/10.1590/S0102-09352013000500021 Español Curimatidae Captivity reproduction of vizcaina Curimata mivartii induced with extract of carp pituitary With the aim of reproducing the vizcaina Curimata mivartii, two-year-old specimens (n = 54), kept in ponds on land (0.1 fish/m2) were induced with carp pituitary extract (EPC) (Argent, USA) at a doses of 6 mg/Kg of weight for females in two applications (10% and 90% with 12 hours between applications), while males were induced with 4.8 mg / Kg EPC in a single dose. Before the hormonal induction, each female underwent an ovarian biopsy to verify the oocytes maturation stage. The oocyte sample was treated with Serra solution (Chemi, Colombia) and after three minutes, with the help of a light stereoscope (Leica, EZ4 W, Germany) in 4x objective, the position of the germinal vesicle was determined (central, migrating, peripheral, breakdown). The analysis of the ovarian biopsy showed that the females were in final maturation. Induced males were found in the spermiation phase; which at light abdominal pressure released seminal fluid. The ovulation index, fecundity (absolute and relative), oocyte diameter and seminal volume were estimated. The percentage of fertility was estimated at four hours after hatching (hah); and the hatching percentage was estimated at 10 hah. The females ovulated between 5 and 6 hours (28±1.0°C) and immediately the eggs were obtained by extrusion, as well as the semen. The absolute fecundity was 178331.6±28773.7 oocytes/female and the relative 137.7±19.6 g oocytes/Kg of female. The diameter of the newly spawned oocytes was 687.2±42.8 μm. Fertility was 90.7±1.4% and hatching 85.3±1.5%. The results allow to conclude that EPC at dosage of 6mg/Kg of weight is a good inducer of the vizcaína reproduction, which high ovulation index and high rates of fertility and hatching. Journal article fecundity hatching spawning 2019-12-16T00:00:00Z https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/download/570/pdf 10.22579/20112629.570 2011-2629 0121-3709 2019-12-16 2019-12-16T00:00:00Z https://doi.org/10.22579/20112629.570 |
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Con el objetivo de reproducir vizcaína Curimata mivartii, ejemplares de dos años de edad (n= 54), mantenidos en estanques en tierra (0,1 pez/m2) fueron inducidos con extracto pituitario de carpa (EPC) (Argent, USA) a razón de 6 mg/Kg de peso para las hembras en dos aplicaciones (10 % y 90% con 12 horas entre aplicación); mientras que los machos fueron inducidos con 4,8 mg/Kg EPC en dosis única. Antes de la inducción hormonal a cada hembra le fue realizada biopsia para verificar su estado de maduración gonadal. La muestra de ovocitos fue tratada con solución Serra (Chemí, Colombia) y después de tres minutos, con la ayuda de un estereoscopio de luz, (Leica, EZ4 W, Alemania) en objetivo de 4x, se determinó posición de la vesícula germinal (céntrico, migrando, periférico, sin núcleo). El análisis de la biopsia ovárica mostró que las hembras se encontraban en maduración final. Los machos inducidos se encontraron en fase de espermiación; los cuales a ligera presión abdominal liberaron líquido seminal. Se estimó el índice de ovulación, fecundidad (absoluta y relativa), diámetro de los ovocitos y volumen seminal. El porcentaje de fertilidad fue estimado a las cuatro horas post-eclosión (hpe) y el porcentaje de eclosión fue estimado a las 10 hpe. Las hembras ovularon entre 5 y 6 horas (28±1,0°C) e inmediatamente los huevos fueron obtenidos por extrusión, así como el semen. La fecundidad absoluta fue de 178331,6±28773,7 ovocitos/hembra y la relativa 137,7±19,6 g ovocitos/Kg de hembra. El diámetro de los ovocitos recién desovados fue de 687,2±42,8 μm. La fertilidad fue de 90,7±1,4% y la eclosión de 85,3±1,5%. Los resultados permiten concluir que EPC a dosificación de 6mg/Kg de peso es un buen inductor de la reproducción de vizcaína, con alto índice de ovulación y altos porcentajes de fertilidad y eclosión.
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With the aim of reproducing the vizcaina Curimata mivartii, two-year-old specimens (n = 54), kept in ponds on land (0.1 fish/m2) were induced with carp pituitary extract (EPC) (Argent, USA) at a doses of 6 mg/Kg of weight for females in two applications (10% and 90% with 12 hours between applications), while males were induced with 4.8 mg / Kg EPC in a single dose. Before the hormonal induction, each female underwent an ovarian biopsy to verify the oocytes maturation stage. The oocyte sample was treated with Serra solution (Chemi, Colombia) and after three minutes, with the help of a light stereoscope (Leica, EZ4 W, Germany) in 4x objective, the position of the germinal vesicle was determined (central, migrating, peripheral, breakdown). The analysis of the ovarian biopsy showed that the females were in final maturation. Induced males were found in the spermiation phase; which at light abdominal pressure released seminal fluid. The ovulation index, fecundity (absolute and relative), oocyte diameter and seminal volume were estimated. The percentage of fertility was estimated at four hours after hatching (hah); and the hatching percentage was estimated at 10 hah. The females ovulated between 5 and 6 hours (28±1.0°C) and immediately the eggs were obtained by extrusion, as well as the semen. The absolute fecundity was 178331.6±28773.7 oocytes/female and the relative 137.7±19.6 g oocytes/Kg of female. The diameter of the newly spawned oocytes was 687.2±42.8 μm. Fertility was 90.7±1.4% and hatching 85.3±1.5%. The results allow to conclude that EPC at dosage of 6mg/Kg of weight is a good inducer of the vizcaína reproduction, which high ovulation index and high rates of fertility and hatching.
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Spatial and temporal distribution of fish eggs and larvae in a subtropical coastal lagoon, Santa Catarina State, Brazil. Neotropical Ichthyology. 2009;7(2):231-240. http://dx.doi.org/10.1590/S1679-62252009000200015 Jiménez-Segura L, Palacio J, López R. Características biológicas del blanquillo (Sorubim cuspicaudus) Littmann, Burr y Nass, 2000 y bagre rayado (Pseudoplatystoma magdaleniatum) Buitrago Suárez y Burr, 2007 (Siluriformes: Pimelodidae) relacionadas con su reproducción en la cuenca media del río Magdalena, Colombia. Actual Biol. 2009;31(90):53-66. http://www.scielo.org.co/pdf/acbi/v31n90/v31n90a5.pdf Honji R, Tolussi C, Mello P, Caneppele D, Moreira R. Embryonic development and larval stages of Steindachneridion parahybae (Siluriformes: Pimelodidae) - implications for the conservation and rearing of this endangered Neotropical species. Neotropical Ichthyology. 2012;10(2):313-327. http://dx.doi.org/10.1590/S1679-62252012005000009 DoNascimento C, Herrera-Collazos EE, Herrera-R GA, Ortega-Lara A, Villa-Navarro FA, Usma Oviedo JS, Maldonado-Ocampo JA. Checklist of the freshwater fishes of Colombia: A Darwin Core alternative to the updating problem. ZooKeys. 2017;708:25-138. https://doi.org/10.3897/zookeys.708.13897 Díaz-Olarte J, Marciales-Caro L, Cristancho VF, Cruz-Casallas PE. Comparación del desarrollo embrionario de Piaractus brachypomus (Serrasalmidae) y Pseudoplatystoma sp. (Pimelodidae). Int. J. Morphol. 2010;28(4):1193-1204. http://dx.doi.org/10.4067/S0717-95022010000400033 Castillo-Losada E, Medina-Robles V, Cruz-Casallas P. Evaluación de la viabilidad de embriones de cachama blanca (Piaractus brachypomus) conservados a -14 °C en diferentes estadios de desarrollo embrionario. Arch Med Vet. 2016; 48(1):69-77 http://dx.doi.org/10.4067/S0301-732X2016000100009 Montes C, Salgado S. 2014. Efecto de la concentración de glucosa sobre la movilidad espermática de la dorada (charúa) Brycon sinuensis (Trabajo de pregrado). Departamento Ciencias Acuícolas, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad de Córdoba, Montería. Botta P, Sciara A, Arranz S, Murgas L, Pereira G, Oberlender G. Estudio del desarrollo embrionario del sábalo (Prochilodus lineatus). Arch Med Vet. 2010;42: 109-114. http://dx.doi.org/10.4067/S0301-732X2010000200014 Baumgartner G, Nakatani K, Gomes LC, Bialetzki A, Sanches PV, Makrakis MC. Fish larvae from the upper Paraná River: do abiotic factors affect larval density Neotrop Ichthyol. 2008;6(4):551-558. http://dx.doi.org/10.1590/S1679-62252008000400002 Avendaño-Ibarra R, Funes-Rodríguez R, Hinojosa-Medina A, González-Armas R, Aceves-Medina G. Seasonal abundance of fish larvae in a subtropical lagoon on in the west coast of the Baja California Peninsula. Estuar Coast Shelf Sci. 2004; 61(1):125-135. https://doi.org/10.1016/j.ecss.2004.03.017 Atencio-García V. Producción de alevinos de especies nativas. Rev MVZ Córdoba. 2001;6(1):9-14. Atencio-García V, Kerguelén-Durango E. Environmental characterization of the reproductive season of migratory fish of the Sinú river (Córdoba, Colombia). Rev MVZ Córdoba. 2015;20(3):4766-4778. http://www.scielo.org.co/pdf/mvz/v20n3/v20n3a10.pdf Atencio-Garcia V, Kerguelén-Durango E, Robert-Petro E. Desempeño reproductivo del bocachico (Prochilodus magdalenae) inducido dos veces en un mismo año. Rev MVZ Córdoba. 2013;18(1):3304-3310. www.scielo.org.co/pdf/mvz/v18n1/v18n1a08.pdf Atencio-Garcia V, Dorado-Longas M, Montes-Petro C, Prieto-Guevara M, Espinosa-Araujo J. Cryopreservation of dorada (Brycon moorei) sperm with dimethyl sulfoxide. Rev. colomb. Biotecnol. 2017;19(2):87-94. http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v19n2.59987 Mojica JI, Usma JS. 2012. Curimata mivartii. En: Mojica JI, Lasso C, Sánchez P, Usma JS, Álvarez R. (eds.). Libro rojo de peces dulceacuícolas de Colombia. Serie Libros Rojos de Especies Amenazadas de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales – Universidad Nacional de Colombia y Ministerio del Medio Ambiente. Bogotá, Colombia. Pp. 107-108. Montes-Petro C. 2018. Evaluación del desempeño reproductivo del bocachico (Prochilodus magdalenae) (Steindachner 1878), en cautiverio mediante predictores tempranos de calidad espermática y ovocitaria. Trabajo de grado, Facultad de Ciencias Básicas. Maestría en Biotecnología, Universidad de Córdoba, Montería, Colombia. Atencio-Garcia V, Arabia RF, Aristizabal J. 2006. Desarrollo embrionario y larvario de dorada (Brycon sinuensis). Comunic. Científ. CIVA. Pp. 604-618. On line: http://www.civa2006.org Zanandrea-volpato A, Weingartner M, Zaniboni-Filho E. Induced reproduction of dourado (Salminus brasiliensis): fertilization with sperm cryopreserved in ACP®-104. Acta Sci Anim Sci. 2016;(38):1. http://dx.doi.org/10.4025/actascianimsci.v38i1.28838 Yaron Z, Bogomolnaya A, Drori S, Biton I, Aizen J, Kulikovsky Z, Levavi-Sivan B. Spawning Induction in the Carp: Past Experience and Future Prospects - A Review. Rev The Israeli Journal of Aquaculture – Bamidgeh. 2009;61(1):5-26. https://www.researchgate.net/publication/263280621_Spawning_Induction_in_the_Carp_Past_Experience_and_Future_Prospects_-_A_Review. Mylonas C, Fostier A, Zanuy S. Broodstock management and hormonal manipulations of fish reproduction. Gen Comp Endocrinol. 2010; 165:516-534. DOI: 10.1016/j.ygcen.2009.03.007 Weingartner M, Zaniboni-Filho E. 2010. Biologia e cultivo do Dourado. In B. Baldisserotto, & L. C. Gomes, (Eds), Espécies Nativas para Piscicultura no Brasil. Santa Maria, RS: Editora UFSM. Pp. 245-281. Valbuena–Villarreal R, Zapata-Berruecos B, Cruz-Casallas P. Reproducción inducida de capaz (Pimelodus grosskopfii) con extracto de hipófisis de carpa: reporte preliminar. Orinoquia. 2010;14(2):133-139. http://www.scielo.org.co/pdf/rori/v14n2/v14n2a03.pdf Valbuena VR, Zapata B, Ruales CD, Cruz-Casallas PE. Desarrollo embrionario del capaz (Pimelodus grosskopfii) (Steindachner, 1879). Int J Morphol. 2012; 30(1):150-156. http://dx.doi.org/10.4067/S0717-95022012000100027 Usma JS, Valderrama M, Escobar MD, Ajiaco-Martínez RE, Villa-Navarro F, Castro F, et al. 2009. Peces dulceacuícolas migratorios en Colombia. Pp. 103 – 131. En: Amaya, J. D. y L. G. Naranjo (Eds.). Plan Nacional de las Especies Migratorias: Diagnóstico e identificación de acciones para la conservación y el manejo sostenible de las especies migratorias de la biodiversidad en Colombia. MAVDT – WWF. Bogotá D. C. Colombia. p.214. Segura-Guevara F, López-Corrales H, De La Hoz C, Olaya-Nieto W. Reproductive biology of Liseta Leporinus muyscorum Steindachner, 1901 in the Sinú River, Colombia Rev MVZ Córdoba. 2017;22(1):5728-5737. http://dx.doi.org/10.21897/rmvz.932 Peressin A, Gonçalves C, Braga De Souza F. Reproductive strategies of two Curimatidae species in a Mogi Guaçu impoundment, upper Paraná River basin, São Paulo, Brazil. Neotropical Ichthyology. 2012;10(4):847-854. http://dx.doi.org/10.1590/S1679-62252012000400018 Nakatani K, Agostino AA, Baumgartner G, Bialetzky A, Sanches PV, Makrakis MC, Pavanelli CS. 2001. Ovos e larvas de peixes de agua doce: desenvolvimento e manual de identifação. Maringa: Eduem. p.377 Atencio-García V, Arguello L, González H. Reproducción inducida de la liseta Leporinus muyscorum (Steindachner, 1920) con extracto pituitario de carpa (EPC) Rev MVZ Córdoba. 2001;5(2):12. DOI: https://doi.org/10.21897/rmvz.529 Arias-Gallo M, Jiménez-Segura L, Dorado-Longas M del P. Desarrollo larval de Prochilodus magdalenae (Steindachner, 1879) (Pisces: prochilodontidae), río Magdalena, Colombia Actual Biol. 2010;32(93):199-208. http://www.scielo.org.co/pdf/acbi/v32n93/v32n93a7.pdf Arias-Acuña J, Hernández-Rangel J. Efectos del extracto hipofisiario de carpa común y el análogo de la GnRH sobre la maduración final del oocito y el desove de la cachama negra (Colossoma macropomum). Revista Científica, FCV-LUZ. 2009;19(5):486-494. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=95911615008 Andrade D, Vidal JM, Godinho H, Tonini W, Burket D. Fecundidade da manjuba Curimatella lepidura (curimatidae) na represa de Três Marias, rio São Francisco, MG. Arq Bras Med Vet Zootec. 2010;62(6):1401-1408. http://dx.doi.org/10.1590/S0102-09352010000600016 Andrade E, Felizardo V, Murgas L, Drumond M, Zangerônimo M, Costa S. Reproductive dynamics of Leporinus obtusidens captured downstream from an important hydropower Station in Brazil. Arq Bras Med Vet Zootec. 2013;5(65): 1419-1426. http://dx.doi.org/10.1590/S0102-09352013000500021 |
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