Evaluación del potencial de cultivo de cuatro especies microalgales nativas del departamento de Bolívar, Colombia

Coulson Reinel , Johana Paola; Torres Virviescas, Martha Jeannette; Henao Castro, Alejandro; Díaz Páramo, Gina Ximena

doi:10.21789/22561498.1821

Evaluación del potencial de cultivo de cuatro especies microalgales nativas del departamento de Bolívar, Colombia

Las microalgas son microorganismos unicelulares fotosintéticos que pueden crecer de forma autotrófica o heterotrófica, se consideran fuente de biomoléculas y metabolitos de importancia nutricional, farmacéutica e industrial ya que pueden utilizarse para la producción de biocombustibles, biofertilizantes, alimento de consumo y tratamiento de aguas residuales. En el presente trabajo se evaluó el potencial de cultivo de cuatro microalgas nativas del departamento de Bolívar provenientes de diferentes cuerpos de agua. Despues de su aislamiento e identificación, las microalgas se cultivaron siguiendo el sistema de escalamiento tipo Batch y una vez se alcanzó la fase exponencial, se procedió a inocular por triplicado 100 mL de cada especie aforand... Ver más

Guardado en:

Revista

Revista Mutis

EISSN

2256-1498

Autores

Coulson Reinel , Johana Paola

Torres Virviescas, Martha Jeannette

Henao Castro, Alejandro

Díaz Páramo, Gina Ximena

Editor

UNIVERSIDAD JORGE TADEO LOZANO

DOI

10.21789/22561498.1821

Volumen

Año de publicación

2021-09-30

Pais

Palabras claves

Licencia

http://purl.org/coar/access_right/c_abf2

info:eu-repo/semantics/openAccess

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.

Revista Mutis - 2022

id	2407801b5a8e2568a2e01560c1651e83
record_format	ojs
spelling	Evaluación del potencial de cultivo de cuatro especies microalgales nativas del departamento de Bolívar, Colombia Hosseini, A., & Shariati, M. (2009). Dunaliella biotechnology: methods and appli-cations. Applied Microbiology, 107, 14-35. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2009.04153.x Pereira, M. F., Jáuregui, G. A., Devia, A. & Rojas, J. (2017). Cultivo de microalgas Isochrysis galbana y Nannochloropsis sp. para alimentación de larvas de peces marinos. Mutis, 7(2), 81-85. https://doi.org/10.21789/22561498.1246 Nurachman, Z., Brataningtyas, D. S., Hartati, & Panggabean, L. M. (2012). Oil from the Tropical Marine Benthic-Diatom Navicula sp. Applied Biochemistry and Biotechnology, 168, 1065-1075. https://doi.org/10.1007/s12010-012-9841-2 Mathiot, C., Ponge, P., Gallard, B., Sassi, J. F., Delrue, F., & Le Moigne, N. (2019). Microalgae starch-based bioplastics: Screening of ten strains and plasticization of unfrac-tionated microalgae by extrusion. Carbohydrate polymers, 208, 142-151. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2018.12.057 Lowe, R. (2003). Keeled and canalled raphid diatoms. Freshwater algae of North America, 669- 684. https://doi.org/10.1016/B978-012741550-5/50020-9 Kociolek, J. P., Theriot, E. C., Williams, D. M., Julius, M., Stoermer, E. F. & Kingston, J. C. (2015). Centric and Araphid Diatoms. Freshwater Algae of North América, 653–708. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-385876-4.00015-3 Johnson, X., y Alric, J. (2013). Central carbon metabolism and electron transport in Chlamydomonas reinhardtii: metabolic constraints for carbon partitioning between oil and starch. Eukaryotic Cell, 12(6), 776-793. https://doi.org/10.1128/EC.00318-12 INVEMAR (Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras “José Benito Vives De Andréis”). (2019). Diagnóstico y Evaluación de la Calidad de las Aguas Marinas y Costeras en el Caribe y Pacífico Colombianos. Informe Técnico 2018. Serie de publicaciones perió-dicas No. 4. Herrero, M., Jaime, L., Martin-Álvarez, P., Cifuentes, A. & Ibáñez, E. (2006). Opti-mization of the extraction of antioxidants from Dunaliella salina microalga by pressurized liquids. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 54(15), 5597-5603. https://doi.org/10.1021/jf060546q Prescott, G. (1970). How to know the freshwater algae. Second Edition. W. C. Brown Company Publishers. Hernández, A. y Labbé, J. I. (2014). Microalgas, cultivo y beneficios. Biología ma-rina y oceanografía, 49(2), 157-173. https://doi.org/10.4067/S0718-19572014000200001 Guisande, C., Barreiro A., Maneiro, I., Riveiro, I., Vergara, A. R. y Vaamonde, A. (2006). Tratamiento de datos. Ediciones Díaz de Santos. Frampton, D. M., Gurney, R. H., Dunstan, G. A., Clementson, L. A., Toifl, M. C., Po-llard, C. B., Burn, S., Jameson, I. D. & Blackburn, S. I. (2013). Evaluation of growth, nutrient utilization and production of bioproducts by a wastewater-isolated microalga. Bioresource Technology, 130, 261–268. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2012.12.001 Estrada, E. (2013). Evaluación del potencial uso de biomasa de las diferentes cepas de microalgas del Atlántico de Guatemala en diferentes áreas de la industria. Tesis de maestría. Universidad de San Carlos de Guatemala. Dufossé, L., Galaup, P., Yaron, A., Arad, S., Blanc, P., Chidambara, K. & Ravishankar, G. (2005). Microorganisms and microalgae as sources of pigments for food use: a scientific oddity or an industrial reality. Trends in Food Science & Technology, 16, 389-406. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2005.02.006 Curbelo, R., Leal, S., Nuñez, N., Quintana, P., Benguela, I., Muñoz, D. y Almaguer, Y. (2004). Cultivo de la microalga bentónica Navicula sp. para la alimentación de las primeras postlarvas de camarón blanco. Revista de Investigaciones Marinas, 25(2), 143-150. CMGRD (Consejo Municipal para la Gestión del Riesgo de Desastres). (2016). Mu-nicipio de San Cristóbal, Bolívar. Chiriboga, O. & Rorrer, G. L. (2019). Phosphate addition strategies for enhancing the co-production of lipid and chitin nanofibers during fed-batch cultivation of the diatom Cyclotella sp. Algal Research, 38, 101403. https://doi.org/10.1016/j.algal.2018.101403 Phong, H., Ngo, H., Guo, W., Liu, Y., Chang, S., Nguyen, D., Nguyen, P., Thanh, X. & Ren, J. (2019). Identification of the pollutants’ removal and mechanism by microalgae in saline wastewater. Bioresource Technology, 275, 44-52. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2018.12.026 Prieto, M. J., Mogollón, M. J., Castro, A. L. & Sierra, L. A. (2005). Efecto del medio y condiciones de cultivo en la productividad de tres diatomeas marinas con potencial acuícola. Medicina Veterinaria y Zootecnia, 10(1), 544-554. https://doi.org/10.21897/rmvz.476 Carrera, S., Velasco, L. A., y Barreto, A. (2018). Potencial de microalgas bentónicas del Mar Caribe como alimento en maricultura. Biología Marina y Oceanografía, 53(3), 321-333. https://doi.org/10.22370/rbmo.2018.53.3.1357 info:eu-repo/semantics/article Text http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 info:eu-repo/semantics/openAccess http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 info:eu-repo/semantics/publishedVersion http://purl.org/redcol/resource_type/ARTREF http://purl.org/coar/resource_type/c_6501 Xiang, X., Ozkan, A., Chiriboga, O., Chotyakul, N. & Kelly, C. (2017). Techno-economic analysis of glucosamine and lipid production from marine diatom Cyclotella sp. Bioresource Technology, 244, 1480-1488. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2017.05.079 Ramírez, E., González, M., Cifuentes, A., Inostroza, I., & Urrutia, R. (2015). Culture and growth of two benthic diatoms species isolated from the Salar del Huasco (North of Chile, 20° S) at different conditions of temperature, light and nutrient. Gayana Botanica, 72(2), 165-176. https://doi.org/10.4067/S0717-66432015000200001 Villamarín-Jiménez, S., Chacón-Castro, M. F. y Álvarez-León, R. (2013). Pruebas de toxicidad aguda CL (I) 50 en peces estuarinos (Gambusia affinis) utilizando efluentes industriales a la Bahía de Cartagena, Colombia. Biosalud, 12(2), 24-39. Torres, M. J. y Sánchez J. H. (2016). Avances del Banco de Cepas de Microalgas en el Centro Internacional Náutico Fluvial y Portuario del SENA. SENNOVA, 2(1), 30-41 https://doi.org/10.23850/23899573.536 Tomas, C. (1997). Identifying marine phytoplankton. Editorial Elsevier. Tejeda, L., Henao, D., Alvear, M. y Castillo, C. R. (2015). Caracterización y perfil li-pídico de aceites de microalgas. Facultad de ingeniería, 24(39), 43-54. https://doi.org/10.19053/01211129.3550 Streble, H. y Krauter, D. (1987). Atlas de los microorganismos de agua dulce, la vida en una gota de agua. Editorial Omega S.A. Barcelona-España. Skjanes, K., Rebours, C. & Lindblad, P. (2013). Potential for green microalgae to produce hydrogen, pharmaceuticals and other high value products in a combined process. Critical Reviews in Biotechnology, 33(2), 172-215. https://doi.org/10.3109/07388551.2012.681625 Serrano, L. (2012). Estudio de cuatro cepas nativas de microalgas para evaluar su potencial uso en la producción de biodiesel (tesis de maestría). Universidad Nacional de Colombia, Bogotá - Colombia. Sathasivam, R., & Juntawong, N. (2013). Modified medium for enhanced growth of Dunaliella strains. Current Science, 5, 67-73. Cheng, D. L., Ngo, H. H., Guo, W. S., Chang, S. W., Nguyen, D. D. & Kumar, S. M. (2019). Microalgae biomass from swine wastewater and its conversion to bioenergy. Bio-resource Technology, 275, 109-122. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2018.12.019 Camargo, W. N., Duran, G. C., Rada, O. C., Hernández, L. C., Linero, J. C., Muelle, I. M. & Sorgeloos, P. (2005). Determination of biological and physicochemical parameters of Artemia franciscana strains in hypersaline environments for aquaculture in the Colombian Caribbean. Saline Systems, 1(9), 1-11. https://doi.org/10.1186/1746-1448-1-9 Bicudo, C., & Menezes, M. (2006). Gêneros de algas de águas continentais do Brasil chave para identificação e descrições. Segunda edición. Editorial Rima. Universidad de Bogotá Jorge Tadeo Lozano Las microalgas son microorganismos unicelulares fotosintéticos que pueden crecer de forma autotrófica o heterotrófica, se consideran fuente de biomoléculas y metabolitos de importancia nutricional, farmacéutica e industrial ya que pueden utilizarse para la producción de biocombustibles, biofertilizantes, alimento de consumo y tratamiento de aguas residuales. En el presente trabajo se evaluó el potencial de cultivo de cuatro microalgas nativas del departamento de Bolívar provenientes de diferentes cuerpos de agua. Despues de su aislamiento e identificación, las microalgas se cultivaron siguiendo el sistema de escalamiento tipo Batch y una vez se alcanzó la fase exponencial, se procedió a inocular por triplicado 100 mL de cada especie aforando hasta 1 litro. Los bioensayos se realizaron utilizando el medio de cultivo Conway modificado y bajo condiciones controladas de temperatura, aireación, intensidad lumínica y fotoperiodo. Se determinaron crecimiento celular y parámetros cinéticos por cuantificación celular utilizando una cámara de Neubauer. Además, se realizó un análisis estadístico de Kruskal-Wallis y la prueba post-hoc de rangos múltiples. Se obtuvo que Dunaliella salina alcanzó la mayor densidad celular (12,957,500 cel/mL) en comparación con Cyclotella meneghiniana (225,000 cel/mL), Nitzschia palea (367,500 cel/mL) y Navicula tripunctata (1,107,500 cel/mL). En la fase exponencial, N. palea presentó la mayor tasa de crecimiento, mayores divisiones por día y menor tiempo de generación. Por el contrario, D. salina presentó menor tasa de crecimiento, menores divisiones por día y mayor tiempo de generación. Las pruebas estadísticas indicaron diferencias significativas entre los cultivos y la prueba a posteriori de rangos múltiples mostró que D. salina fue la especie con crecimiento poblacional diferente, por lo cual es apropiada para cultivarse en forma masiva y con fines comerciales para la obtención de bioproductos. Coulson Reinel , Johana Paola Torres Virviescas, Martha Jeannette Henao Castro, Alejandro Díaz Páramo, Gina Ximena Bioensayo Biomasa Crecimiento celular Cultivo algal Microalga 12 2 Artículo de revista application/pdf Publication Revista Mutis https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0 Barreto, A. & Velasco, L. A. (2014). Aislamiento y cultivo de microalgas bentónicas del caribe colombiano bajo diferentes condiciones de temperatura. Intropica, 9, 23-32. https://doi.org/10.21676/23897864.1422 Barnech, G. (2015). Cultivo y análisis lipídico de la diatomea Navicula cincta, ais-lada del Estuario de Bahía Blanca (Pcia. Bs. As, Argentina): evaluación del potencial uso biotecnológico. Tesis Doctoral. Universidad Nacional del Sur. Argentina. Baldiris-Navarro, I., Sánchez, J. H. & Torres, M. (2017). Validation, characterization and comparison of microalgae Chlorella vulgaris and Chlamydomona reinhardtii growth kinetics. International Journal of Chemtech Research, 10(15), 411-420. Andersen, R. & Kawachi, M. (2005). Traditional Microalgae Isolation Techniques in Algal culturing techniques. Elsevier academic press. https://doi.org/10.1016/B978-012088426-1/50007-X Álvarez, H. (1994). Introducción al Método Ficológico. Capitulo III. Escuela Supe-rior Politécnica del Litoral, Ecuador, 375. Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0. Revista Mutis - 2022 Alcaldía Municipal de María la Baja (2015). Plan de desarrollo María La Baja 2016-2019. Español https://revistas.utadeo.edu.co/index.php/mutis/article/view/Evaluacion-potencial-cultivo-cuatro-especies-microalgales-nativas-departamento-Bolivar-Colombia Bioassay Microalgae are unicellular photosynthetic microorganisms that can grow autotrophically or heterotrophically. They are considered a source of biomolecules and metabolites of nutritional, pharmaceutical and industrial importance since they can be used for the production of biofuels, biofertilizers, food for consumption and wastewater treatment. In the present work, the cultivation potential of four native microalgae from the department of Bolívar from different bodies of water was evaluated. After their isolation and identification, the microalgae were cultivated following the Batch-type scaling system and once the exponential phase was reached, 100 mL of each species was inoculated in triplicate, measuring up to 1 liter. The bioassays were carried out using the modified Conway culture medium and under controlled conditions of temperature, aeration, light intensity and photoperiod. Cell growth and kinetic parameters were determined by cell quantification using a Neubauer chamber. In addition, a Kruskal-Wallis statistical analysis and the post-hoc multiple range test were performed.It was found that Dunaliella salina reached the highest cell density (12,957,500 cell/mL) compared to Cyclotella meneghiniana (225,000 cell/mL), Nitzschia palea (367,500 cell/mL) and Navicula tripunctata (1,107,500 cell/mL). In the exponential phase, N. palea presented the highest growth rate, the highest divisions per day and the shortest generation time. On the contrary, D. salina presented a lower growth rate, lower divisions per day and longer generation time. Statistical tests indicated significant differences between the cultures and the multiple range a posteriori test showed that D. salina was the species with different population growth, making it suitable for mass cultivation for commercial purposes to obtain bioproducts Evaluation of the Cultivation Potential of Four Microalgal Species Native to The Department of Bolivar, Colombia Biomass Cell growth Algae culture Microalgae Journal article https://revistas.utadeo.edu.co/index.php/mutis/article/download/Evaluacion-potencial-cultivo-cuatro-especies-microalgales-nativas-departamento-Bolivar-Colombia/1872 https://doi.org/10.21789/22561498.1821 2256-1498 2021-09-30T00:00:00Z 2021-09-30T00:00:00Z 10.21789/22561498.1821 2021-09-30
institution	UNIVERSIDAD JORGE TADEO LOZANO
thumbnail	https://nuevo.metarevistas.org/UNIVERSIDADJORGETADEOLOZANO/logo.png
country_str	Colombia
collection	Revista Mutis
title	Evaluación del potencial de cultivo de cuatro especies microalgales nativas del departamento de Bolívar, Colombia
spellingShingle	Evaluación del potencial de cultivo de cuatro especies microalgales nativas del departamento de Bolívar, Colombia Coulson Reinel , Johana Paola Torres Virviescas, Martha Jeannette Henao Castro, Alejandro Díaz Páramo, Gina Ximena Bioensayo Biomasa Crecimiento celular Cultivo algal Microalga Bioassay Biomass Cell growth Algae culture Microalgae
title_short	Evaluación del potencial de cultivo de cuatro especies microalgales nativas del departamento de Bolívar, Colombia
title_full	Evaluación del potencial de cultivo de cuatro especies microalgales nativas del departamento de Bolívar, Colombia
title_fullStr	Evaluación del potencial de cultivo de cuatro especies microalgales nativas del departamento de Bolívar, Colombia
title_full_unstemmed	Evaluación del potencial de cultivo de cuatro especies microalgales nativas del departamento de Bolívar, Colombia
title_sort	evaluación del potencial de cultivo de cuatro especies microalgales nativas del departamento de bolívar, colombia
title_eng	Evaluation of the Cultivation Potential of Four Microalgal Species Native to The Department of Bolivar, Colombia
description	Las microalgas son microorganismos unicelulares fotosintéticos que pueden crecer de forma autotrófica o heterotrófica, se consideran fuente de biomoléculas y metabolitos de importancia nutricional, farmacéutica e industrial ya que pueden utilizarse para la producción de biocombustibles, biofertilizantes, alimento de consumo y tratamiento de aguas residuales. En el presente trabajo se evaluó el potencial de cultivo de cuatro microalgas nativas del departamento de Bolívar provenientes de diferentes cuerpos de agua. Despues de su aislamiento e identificación, las microalgas se cultivaron siguiendo el sistema de escalamiento tipo Batch y una vez se alcanzó la fase exponencial, se procedió a inocular por triplicado 100 mL de cada especie aforando hasta 1 litro. Los bioensayos se realizaron utilizando el medio de cultivo Conway modificado y bajo condiciones controladas de temperatura, aireación, intensidad lumínica y fotoperiodo. Se determinaron crecimiento celular y parámetros cinéticos por cuantificación celular utilizando una cámara de Neubauer. Además, se realizó un análisis estadístico de Kruskal-Wallis y la prueba post-hoc de rangos múltiples. Se obtuvo que Dunaliella salina alcanzó la mayor densidad celular (12,957,500 cel/mL) en comparación con Cyclotella meneghiniana (225,000 cel/mL), Nitzschia palea (367,500 cel/mL) y Navicula tripunctata (1,107,500 cel/mL). En la fase exponencial, N. palea presentó la mayor tasa de crecimiento, mayores divisiones por día y menor tiempo de generación. Por el contrario, D. salina presentó menor tasa de crecimiento, menores divisiones por día y mayor tiempo de generación. Las pruebas estadísticas indicaron diferencias significativas entre los cultivos y la prueba a posteriori de rangos múltiples mostró que D. salina fue la especie con crecimiento poblacional diferente, por lo cual es apropiada para cultivarse en forma masiva y con fines comerciales para la obtención de bioproductos.
description_eng	Microalgae are unicellular photosynthetic microorganisms that can grow autotrophically or heterotrophically. They are considered a source of biomolecules and metabolites of nutritional, pharmaceutical and industrial importance since they can be used for the production of biofuels, biofertilizers, food for consumption and wastewater treatment. In the present work, the cultivation potential of four native microalgae from the department of Bolívar from different bodies of water was evaluated. After their isolation and identification, the microalgae were cultivated following the Batch-type scaling system and once the exponential phase was reached, 100 mL of each species was inoculated in triplicate, measuring up to 1 liter. The bioassays were carried out using the modified Conway culture medium and under controlled conditions of temperature, aeration, light intensity and photoperiod. Cell growth and kinetic parameters were determined by cell quantification using a Neubauer chamber. In addition, a Kruskal-Wallis statistical analysis and the post-hoc multiple range test were performed.It was found that Dunaliella salina reached the highest cell density (12,957,500 cell/mL) compared to Cyclotella meneghiniana (225,000 cell/mL), Nitzschia palea (367,500 cell/mL) and Navicula tripunctata (1,107,500 cell/mL). In the exponential phase, N. palea presented the highest growth rate, the highest divisions per day and the shortest generation time. On the contrary, D. salina presented a lower growth rate, lower divisions per day and longer generation time. Statistical tests indicated significant differences between the cultures and the multiple range a posteriori test showed that D. salina was the species with different population growth, making it suitable for mass cultivation for commercial purposes to obtain bioproducts
author	Coulson Reinel , Johana Paola Torres Virviescas, Martha Jeannette Henao Castro, Alejandro Díaz Páramo, Gina Ximena
author_facet	Coulson Reinel , Johana Paola Torres Virviescas, Martha Jeannette Henao Castro, Alejandro Díaz Páramo, Gina Ximena
topicspa_str_mv	Bioensayo Biomasa Crecimiento celular Cultivo algal Microalga
topic	Bioensayo Biomasa Crecimiento celular Cultivo algal Microalga Bioassay Biomass Cell growth Algae culture Microalgae
topic_facet	Bioensayo Biomasa Crecimiento celular Cultivo algal Microalga Bioassay Biomass Cell growth Algae culture Microalgae
citationvolume	12
citationissue	2
publisher	Universidad de Bogotá Jorge Tadeo Lozano
ispartofjournal	Revista Mutis
source	https://revistas.utadeo.edu.co/index.php/mutis/article/view/Evaluacion-potencial-cultivo-cuatro-especies-microalgales-nativas-departamento-Bolivar-Colombia
language	Español
format	Article
rights	http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 info:eu-repo/semantics/openAccess https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0 Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0. Revista Mutis - 2022
references	Hosseini, A., & Shariati, M. (2009). Dunaliella biotechnology: methods and appli-cations. Applied Microbiology, 107, 14-35. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2009.04153.x Pereira, M. F., Jáuregui, G. A., Devia, A. & Rojas, J. (2017). Cultivo de microalgas Isochrysis galbana y Nannochloropsis sp. para alimentación de larvas de peces marinos. Mutis, 7(2), 81-85. https://doi.org/10.21789/22561498.1246 Nurachman, Z., Brataningtyas, D. S., Hartati, & Panggabean, L. M. (2012). Oil from the Tropical Marine Benthic-Diatom Navicula sp. Applied Biochemistry and Biotechnology, 168, 1065-1075. https://doi.org/10.1007/s12010-012-9841-2 Mathiot, C., Ponge, P., Gallard, B., Sassi, J. F., Delrue, F., & Le Moigne, N. (2019). Microalgae starch-based bioplastics: Screening of ten strains and plasticization of unfrac-tionated microalgae by extrusion. Carbohydrate polymers, 208, 142-151. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2018.12.057 Lowe, R. (2003). Keeled and canalled raphid diatoms. Freshwater algae of North America, 669- 684. https://doi.org/10.1016/B978-012741550-5/50020-9 Kociolek, J. P., Theriot, E. C., Williams, D. M., Julius, M., Stoermer, E. F. & Kingston, J. C. (2015). Centric and Araphid Diatoms. Freshwater Algae of North América, 653–708. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-385876-4.00015-3 Johnson, X., y Alric, J. (2013). Central carbon metabolism and electron transport in Chlamydomonas reinhardtii: metabolic constraints for carbon partitioning between oil and starch. Eukaryotic Cell, 12(6), 776-793. https://doi.org/10.1128/EC.00318-12 INVEMAR (Instituto de Investigaciones Marinas y Costeras “José Benito Vives De Andréis”). (2019). Diagnóstico y Evaluación de la Calidad de las Aguas Marinas y Costeras en el Caribe y Pacífico Colombianos. Informe Técnico 2018. Serie de publicaciones perió-dicas No. 4. Herrero, M., Jaime, L., Martin-Álvarez, P., Cifuentes, A. & Ibáñez, E. (2006). Opti-mization of the extraction of antioxidants from Dunaliella salina microalga by pressurized liquids. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 54(15), 5597-5603. https://doi.org/10.1021/jf060546q Prescott, G. (1970). How to know the freshwater algae. Second Edition. W. C. Brown Company Publishers. Hernández, A. y Labbé, J. I. (2014). Microalgas, cultivo y beneficios. Biología ma-rina y oceanografía, 49(2), 157-173. https://doi.org/10.4067/S0718-19572014000200001 Guisande, C., Barreiro A., Maneiro, I., Riveiro, I., Vergara, A. R. y Vaamonde, A. (2006). Tratamiento de datos. Ediciones Díaz de Santos. Frampton, D. M., Gurney, R. H., Dunstan, G. A., Clementson, L. A., Toifl, M. C., Po-llard, C. B., Burn, S., Jameson, I. D. & Blackburn, S. I. (2013). Evaluation of growth, nutrient utilization and production of bioproducts by a wastewater-isolated microalga. Bioresource Technology, 130, 261–268. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2012.12.001 Estrada, E. (2013). Evaluación del potencial uso de biomasa de las diferentes cepas de microalgas del Atlántico de Guatemala en diferentes áreas de la industria. Tesis de maestría. Universidad de San Carlos de Guatemala. Dufossé, L., Galaup, P., Yaron, A., Arad, S., Blanc, P., Chidambara, K. & Ravishankar, G. (2005). Microorganisms and microalgae as sources of pigments for food use: a scientific oddity or an industrial reality. Trends in Food Science & Technology, 16, 389-406. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2005.02.006 Curbelo, R., Leal, S., Nuñez, N., Quintana, P., Benguela, I., Muñoz, D. y Almaguer, Y. (2004). Cultivo de la microalga bentónica Navicula sp. para la alimentación de las primeras postlarvas de camarón blanco. Revista de Investigaciones Marinas, 25(2), 143-150. CMGRD (Consejo Municipal para la Gestión del Riesgo de Desastres). (2016). Mu-nicipio de San Cristóbal, Bolívar. Chiriboga, O. & Rorrer, G. L. (2019). Phosphate addition strategies for enhancing the co-production of lipid and chitin nanofibers during fed-batch cultivation of the diatom Cyclotella sp. Algal Research, 38, 101403. https://doi.org/10.1016/j.algal.2018.101403 Phong, H., Ngo, H., Guo, W., Liu, Y., Chang, S., Nguyen, D., Nguyen, P., Thanh, X. & Ren, J. (2019). Identification of the pollutants’ removal and mechanism by microalgae in saline wastewater. Bioresource Technology, 275, 44-52. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2018.12.026 Prieto, M. J., Mogollón, M. J., Castro, A. L. & Sierra, L. A. (2005). Efecto del medio y condiciones de cultivo en la productividad de tres diatomeas marinas con potencial acuícola. Medicina Veterinaria y Zootecnia, 10(1), 544-554. https://doi.org/10.21897/rmvz.476 Carrera, S., Velasco, L. A., y Barreto, A. (2018). Potencial de microalgas bentónicas del Mar Caribe como alimento en maricultura. Biología Marina y Oceanografía, 53(3), 321-333. https://doi.org/10.22370/rbmo.2018.53.3.1357 Xiang, X., Ozkan, A., Chiriboga, O., Chotyakul, N. & Kelly, C. (2017). Techno-economic analysis of glucosamine and lipid production from marine diatom Cyclotella sp. Bioresource Technology, 244, 1480-1488. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2017.05.079 Ramírez, E., González, M., Cifuentes, A., Inostroza, I., & Urrutia, R. (2015). Culture and growth of two benthic diatoms species isolated from the Salar del Huasco (North of Chile, 20° S) at different conditions of temperature, light and nutrient. Gayana Botanica, 72(2), 165-176. https://doi.org/10.4067/S0717-66432015000200001 Villamarín-Jiménez, S., Chacón-Castro, M. F. y Álvarez-León, R. (2013). Pruebas de toxicidad aguda CL (I) 50 en peces estuarinos (Gambusia affinis) utilizando efluentes industriales a la Bahía de Cartagena, Colombia. Biosalud, 12(2), 24-39. Torres, M. J. y Sánchez J. H. (2016). Avances del Banco de Cepas de Microalgas en el Centro Internacional Náutico Fluvial y Portuario del SENA. SENNOVA, 2(1), 30-41 https://doi.org/10.23850/23899573.536 Tomas, C. (1997). Identifying marine phytoplankton. Editorial Elsevier. Tejeda, L., Henao, D., Alvear, M. y Castillo, C. R. (2015). Caracterización y perfil li-pídico de aceites de microalgas. Facultad de ingeniería, 24(39), 43-54. https://doi.org/10.19053/01211129.3550 Streble, H. y Krauter, D. (1987). Atlas de los microorganismos de agua dulce, la vida en una gota de agua. Editorial Omega S.A. Barcelona-España. Skjanes, K., Rebours, C. & Lindblad, P. (2013). Potential for green microalgae to produce hydrogen, pharmaceuticals and other high value products in a combined process. Critical Reviews in Biotechnology, 33(2), 172-215. https://doi.org/10.3109/07388551.2012.681625 Serrano, L. (2012). Estudio de cuatro cepas nativas de microalgas para evaluar su potencial uso en la producción de biodiesel (tesis de maestría). Universidad Nacional de Colombia, Bogotá - Colombia. Sathasivam, R., & Juntawong, N. (2013). Modified medium for enhanced growth of Dunaliella strains. Current Science, 5, 67-73. Cheng, D. L., Ngo, H. H., Guo, W. S., Chang, S. W., Nguyen, D. D. & Kumar, S. M. (2019). Microalgae biomass from swine wastewater and its conversion to bioenergy. Bio-resource Technology, 275, 109-122. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2018.12.019 Camargo, W. N., Duran, G. C., Rada, O. C., Hernández, L. C., Linero, J. C., Muelle, I. M. & Sorgeloos, P. (2005). Determination of biological and physicochemical parameters of Artemia franciscana strains in hypersaline environments for aquaculture in the Colombian Caribbean. Saline Systems, 1(9), 1-11. https://doi.org/10.1186/1746-1448-1-9 Bicudo, C., & Menezes, M. (2006). Gêneros de algas de águas continentais do Brasil chave para identificação e descrições. Segunda edición. Editorial Rima. Barreto, A. & Velasco, L. A. (2014). Aislamiento y cultivo de microalgas bentónicas del caribe colombiano bajo diferentes condiciones de temperatura. Intropica, 9, 23-32. https://doi.org/10.21676/23897864.1422 Barnech, G. (2015). Cultivo y análisis lipídico de la diatomea Navicula cincta, ais-lada del Estuario de Bahía Blanca (Pcia. Bs. As, Argentina): evaluación del potencial uso biotecnológico. Tesis Doctoral. Universidad Nacional del Sur. Argentina. Baldiris-Navarro, I., Sánchez, J. H. & Torres, M. (2017). Validation, characterization and comparison of microalgae Chlorella vulgaris and Chlamydomona reinhardtii growth kinetics. International Journal of Chemtech Research, 10(15), 411-420. Andersen, R. & Kawachi, M. (2005). Traditional Microalgae Isolation Techniques in Algal culturing techniques. Elsevier academic press. https://doi.org/10.1016/B978-012088426-1/50007-X Álvarez, H. (1994). Introducción al Método Ficológico. Capitulo III. Escuela Supe-rior Politécnica del Litoral, Ecuador, 375. Alcaldía Municipal de María la Baja (2015). Plan de desarrollo María La Baja 2016-2019.
type_driver	info:eu-repo/semantics/article
type_coar	http://purl.org/coar/resource_type/c_6501
type_version	info:eu-repo/semantics/publishedVersion
type_coarversion	http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85
type_content	Text
publishDate	2021-09-30
date_accessioned	2021-09-30T00:00:00Z
date_available	2021-09-30T00:00:00Z
url	https://revistas.utadeo.edu.co/index.php/mutis/article/view/Evaluacion-potencial-cultivo-cuatro-especies-microalgales-nativas-departamento-Bolivar-Colombia
url_doi	https://doi.org/10.21789/22561498.1821
eissn	2256-1498
doi	10.21789/22561498.1821
url2_str_mv	https://revistas.utadeo.edu.co/index.php/mutis/article/download/Evaluacion-potencial-cultivo-cuatro-especies-microalgales-nativas-departamento-Bolivar-Colombia/1872
_version_	1797158838945710080

Evaluación del potencial de cultivo de cuatro especies microalgales nativas del departamento de Bolívar, Colombia

Código QR

Estadísticas y Métricas Alternativas

Títulos similares